(Атопический дерматит у собак. Окончание. Начало в СВМ № 1/2024)
Подробная интерпретация анамнестических и клинических особенностей АД у собак
Начальным клиническим признаком АД у собак является зуд, который может вызывать расчёсывание, трение, жевание, чрезмерный уход (груминг) или облизывание, подёргивание и/или потряхивание головы. В зависимости от задействованных аллергенов зуд может быть сезонным (например, пыльца) или несезонным (например, пылевые клещи, пищевые продукты) [42]. Вначале зуд может быть при неповреждённой коже или связанным с первичными поражениями кожи, такими как эритема и иногда папулы (таблица 2) [43; 44]. При АД у собак чаще всего поражаются морда, вогнутая часть ушных раковин, брюшная полость, подмышечные впадины, паховая область, область промежности и дистальные отделы конечностей [43], но были выявлены связанные с породой вариации участков тела, поражённых АДС (таблица 3) [3]. При хронизации процесса вторичные поражения кожи (таблица 2) будут возникать из-за самотравмирования, хронического воспаления и вторичных инфекций. Типичными вторичными поражениями кожи являются экскориации, алопеция, лихенификация, гиперпигментация, образование корок и себорея (илл. 8 a–c).
Таблица 2. Основные дерматологические особенности ассоциированных с зудом кожных заболеваний собак
| Кожный зуд без повреждений кожи | Может наблюдаться на ранних стадиях аллергии или в начале сезонного заболевания. Также зуд на участках с неповреждённой кожей может наблюдаться у собак при АД на любом этапе заболевания, особенно в случае рецидива или ремиссии |
| Первичные поражения кожи | |
| Эритема | Может наблюдаться при большинстве из вышеперечисленных симптомов, но вши и хейлетиелла обычно эритему не вызывают. Демодекоз весьма вариабелен — кожа может казаться воспалённой, а может неповреждённой |
| Папулы | Наблюдаются при укусах блох, чесотке, тромбикулёзе, повышенной чувствительности к укусам насекомых, стафилококковой пиодермии, атопическом дерматите, кожных нежелательных реакциях на корм и контактном дерматите. У собак с АД могут быть небольшие папулы без корки, если нет сопутствующих заболеваний |
| Пустулы | Чаще всего связаны со стафилококковой пиодермией |
| Вторичные поражения кожи | |
| Эпидермальные воротнички | Чаще всего связаны со стафилококковой пиодермией |
| Образование корок | Чаще всего связано с вторичными инфекциями и экскориациями |
| Окрашивание слюной | Указывает на чрезмерное облизывание и часто ассоциируется с малассезией |
| Экскориации | Травма, вызванная самопроизвольным расчёсыванием из-за сильного зуда |
| Алопеция | Может быть вызвана самоповреждением или фолликулитом (поверхностная пиодермия, демодекоз и дерматофития) |
| Лихенификация | Указывает на хронический зуд, воспаление и обычно ассоциируется с вторичными инфекциями |
| Гиперпигментация | Указывает на хронический зуд. Аллергия и малассезии являются наиболее распространёнными причинами и приводят к потемнению кожи. Синевато-серая пигментация в некоторых случаях наблюдается при демодекозе |
Таблица 3. Дополнительные участки тела, типичные для поражений при АДС у определённых пород [3]
| Далматин | Губы |
| Французский бульдог | Веки, складки кожи |
| Немецкая овчарка | Локти, задние конечности, грудная клетка |
| Шарпей | Грудная клетка, складки кожи, дорсо-поясничная область |
| Вест-хайленд-уайт-терьер | Дорсо-поясничная область, губы, сгибательные поверхности |
| Боксёр | Уши |
Новым инструментом, помогающим в интерпретации клинических результатов при обследовании собаки, страдающей зудом, является применение клинических критериев, известных как «критерии Фавро» (таблица 4) [5]. Они были разработаны на основе большой серии подтверждённых случаев АД у собак. Использование сложного статистического анализа позволило выявить набор клинических признаков, которые имели максимальную связь с АДС. Анализ выявил два набора критериев, которые дают различные уровни чувствительности и специфичности для данной патологии. Клиницисты могут использовать тот набор, который наилучшим образом отвечает их потребностям. Например, использование набора критериев, дающих наивысшую специфичность, с большей вероятностью гарантирует, что в конкретном случае действительно имеется АД. Однако этот набор исключил бы некоторых собак с зудом, которые также страдают этим заболеванием. Набор, дающий самую высокую чувствительность, с большей вероятностью фиксирует случаи АД у собак, но он может позволить классифицировать некоторых собак с другими заболеваниями как атопических, когда на самом деле это не так. Рекомендации по применению этих наборов критериев приведены в таблице 4.
Таблица 4. Критерии Фавро [5]
| Использование | Надёжность | |
| Набор 1:
1. Возраст начала заболевания < 3 лет 2. В основном в помещении 3. Зуд, вызванный кортикостероидами 4. Хронические или рецидивирующие дрожжевые инфекции 5. Поражённые передние лапы 6. Поражённые ушные раковины 7. Незатронутые края ушей 8. Незатронутая дорсо-поясничная область |
• Использовать для клинических исследований и адаптировать требуемые критерии в зависимости от цели исследования
• Если требуется более высокая специфичность, должны быть выполнены 6 критериев (например, испытания лекарств с потенциальными побочными эффектами) • Если требуется более высокая чувствительность, должны быть выполнены 5 критериев (например, эпидемиологические исследования) |
• 5 критериев:
Чувствительность 85,4% Специфичность 79,1% • 6 критериев: Чувствительность 58,2% Специфичность 88,5% |
| Набор 2:
1. Возраст начала заболевания < 3 лет 2. В основном в помещении 3. «Оральный» зуд в начале 4. Поражённые передние лапы 5. Поражённые ушные раковины 6. Незатронутые края ушей 7. Незатронутая дорсо-поясничная область |
• Используется для оценки вероятности диагноза АД у собак
• 5 критериев должны быть выполнены • Не используйте отдельно для диагностики АД у собак и исключите похожие заболевания |
• 5 критериев:
Чувствительность 77,2% Специфичность 83% • 6 критериев: Чувствительность 42% Специфичность 93,7% |
Важно помнить, что эти критерии не следует использовать изолированно в качестве диагностического теста на АДС. Их следует применять наряду с другими рекомендациями, изложенными в этом обзоре. Другими словами, точность использования этих критериев будет значительно повышена, если собака была подвергнута тщательному обследованию, как описано в предыдущем разделе.
 |
| Илл. 8 a, b, c. Типичное распределение вторичных поражений кожи у вест-хайленд-уайт-терьера |
Тестирование на аллергию
После постановки клинического диагноза АДС несколько факторов могут сыграть роль в принятии решения о необходимости проведения теста на аллергию. Тяжёлые клинические признаки, продолжительность клинических проявлений более 3 месяцев в году и недостаточная симптоматическая терапия из-за побочных эффектов используемых препаратов и/или плохого соблюдения требований владельцем оправдывают в большинстве случаев тестирование на аллергию. Могут быть выполнены внутрикожное тестирование и серологический тест на аллерген-специфический IgE. Оба теста не рекомендуются в качестве скрининговых и должны использоваться только для подтверждения клинического диагноза АД у собак. Результаты этих тестов также используются для идентификации аллергена(ов), вызывающего аллергию, с целью разработки аллерген-специфической иммунотерапии (АСИТ). Хотя внутрикожное тестирование считается среди дерматологов предпочтительным методом диагностики, серологический тест на аллерген-специфический IgE имеет ряд преимуществ, таких как: отсутствие риска для пациента (не требуется седации), менее травматичный (не требуется повторных инъекций), более удобный (занимает меньше времени) и более низкий риск влияния лекарств на результаты теста (одновременная противовоспалительная / противозудная терапия) [45; 46]. Однако серологический анализ определяет только циркулирующий аллерген-специфический IgE, не учитывает другие пути развития аллергии и часто даёт ложноположительные реакции [47; 48].
И внутрикожное тестирование, и серологический тест на аллерген-специфический IgE всё ещё не стандартизированы, и есть подозрение, что имеют место ложноположительные и ложноотрицательные результаты. Подсчитано, что от 10 до 30% собак с клинически подтверждённым АД могут демонстрировать отрицательный результат при внутрикожном тесте [49; 50]. Такой высокий процент ложноотрицательных результатов может быть вызван несколькими факторами, включая неправильную технику, слишком низкую концентрацию аллергенов в тесте [51; 52], лекарственное вмешательство [46], внутренние факторы хозяина, неправильный выбор аллергенов, проведение теста через слишком большой (> 60 дней) промежуток после или во время пикового сезона аллергии и наличие состояния, называемого дерматитом, подобным атопическому [49].
Дерматит, подобный атопическому, клинически идентичен АД, но реакция IgE на аллергены окружающей среды или другие аллергены не может быть задокументирована [1]. Однако в недавнем исследовании это состояние было связано с опосредованной лимфоцитами реакцией на пищу [53]. Хотя хорошо известно, что у людей возраст и сезон могут влиять на результаты ASIS [54], у собак эта информация не была хорошо изучена.
Оба метода тестирования сильно отличаются и не стандартизированы, что неизбежно приводит к плохой корреляции между обоими тестами [55]. Тем не менее, показатель успеха АСИТ, основанный на ASIS, по сравнению с IDT существенно не отличается [56]. Наконец, важно помнить, что, хотя доступно мало информации, сообщалось о перекрёстных реакциях между родственными аллергенами, например, домашней пылью и мучными клещами [57–59]. Исходя из этой проблемы, важно определить, действительно ли собака подвергалась воздействию аллергена(ов), на который(е) она тоже отреагировала. Правильная интерпретация результатов этих тестов в сочетании с историей болезни и клиническими проявлениями может быть сложной и отнимать много времени. По этой причине рекомендуется направление к ветеринарному дерматологу.
Внутрикожное тестирование
IDT является косвенным показателем реактивности тучных клеток кожи из-за присутствия IgE [2]. Правильный выбор аллергенов для тестирования имеет основополагающее значение для получения надёжных результатов IDT. Фактически аллергены, в основном пыльца, подвержены большой географической изменчивости. Таким образом, ветеринарам, проводящим IDT, важно идентифицировать аллергены, присутствующие в регионе проживания пациентов. Информацию о соответствующих аллергенах можно получить, обратившись к ветеринарным дерматологам, ветеринарным и медицинским школам, лабораториям аллергологии, учебникам, местным врачам-аллергологам, метеорологическому бюро, а также Национальному бюро аллергии (http://www.worldallergy.org/pollen /) [49]. Время от времени следует оценивать общие результаты IDT и заменять аллергены, на которые не наблюдается реакции, другими важными аллергенами [49]. Концентрация внутрикожного теста также может быть скорректирована, поскольку с течением времени были предложены различные концентрации теста (таблица 5) [49; 51; 52; 60].
Таблица 5. Рекомендуемые концентрации IDT для большинства поставщиков аллергена
| Аллерген | Рекомендуемое разведение аллергена для IDT [49] |
Пересмотренное рекомендуемое разведение аллергена для IDT [51; 52; 60] |
| Гистамин | 1:100 000 в/о | 1:10 000 в/о |
| Пыльца и плесень | 1000 PNU/мл | от 1000 до 8000 PNU/мл |
| Индивидуальный ПК | 250 PNU/мл или 1: 50 000 в/о | 100–200 ЕД/мл (D. pteronyssinus) |
| 75 ЕД/мл (D. farina, Tyrophagus putrescentiae и Lepidoglyphus destructor) | ||
| 50 ЕД/мл (Acarus siro и Blomia tropicalis) | ||
| Эпидермальные экстракты | 250–500 PNU/мл | не менее 1250 PNU/мл |
| 300 ЕД/ мл (перхоть человека) | ||
| Насекомые | 1000 PNU/мл | не менее 1750 PNU/мл |
| Цельный экстракт блох | 1:1000 в/о | 1:500 в/о |
PNU (Protein Nitrogen Units) — белковые азотные единицы, в/о — вес/объём, вес к объёму; ПК — пылевые клещи; эпидермальные экстракты: волосы, шерсть, перья и перхоть.
Аллергены относительно стабильны после разведения и могут храниться в стеклянных флаконах до 8 недель и в пластиковых шприцах до 2 недель при температуре 4 °C [49]. Исследуемые растворы следует вынимать из холодильника непосредственно перед проведением IDT на время, достаточное для нагрева до комнатной температуры. Как упоминалось ранее, выбор тестируемых аллергенов должен производиться на основе распространённости аллергенов в конкретном географическом регионе. Однако выбор тестируемых аллергенов часто основывается на личных предпочтениях и опыте и может значительно различаться у дерматологов даже в пределах одного географического региона [61].
Внутрикожные инъекции для IDT чаще всего выполняются в боковой части грудной клетки, после того как волосы аккуратно подстрижены и места инъекций отмечены (на расстоянии не менее 2 см друг от друга). Обычно объём 0,05–0,1 мл каждой тестируемой концентрации вводят внутрикожно и оценивают через 15–20 минут. Реакция в каждом месте инъекции будет сравниваться с реакцией положительного (гистаминфосфат) и отрицательного (физиологический раствор с фенолом) контрольных образцов. Реакция может быть прочитана субъективно и/или объективно. В первом случае будет рассмотрена оценка интенсивности и/или размера эритемы, набухания и/или образования волдырей, в то время как для объективной оценки измеряется средний диаметр области образования эритемы или волдырей. Однако при сравнении двух методологий друг с другом не было обнаружено существенных различий [62]. Согласно соглашению, реакция на аллерген считается положительной, когда образующаяся сыпь по меньшей мере равна или превышает половину между отрицательной и положительной контрольной реакцией. Если используется субъективная оценка, положительный контроль будет иметь стандартную оценку 4, тогда как отрицательный контроль будет оценён как 0. Реакция на аллерген считается положительной, если она оценивается как 2 или выше [49].
Многие положительные контрольные группы были протестированы на IDT у собак; из них наиболее надёжным является гистаминфосфат. Гистамин использовался в соотношении 1:10 000 в/о (0,1 мг/мл) в Европе и 1:100 000 в/о (0,01 мг/мл) в США; тем не менее, было высказано предположение, что более концентрированный раствор (1:10 000) может давать более стойкую положительную кожную реакцию [51; 63]. Отрицательный контроль должен состоять из раствора, который используется для разведения аллергенов для IDT; обычно это стерильный физиологический раствор с фенолом в качестве консерванта.
Серологическое тестирование аллерген-специфического IgE
Несколько анализов, в основном основанных на твердофазном ELISA, были протестированы на сывороточный IgE как у людей, так и в ветеринарии. Эти анализы используются для выявления специфических антител IgE против группы аллергенов (например, пыльцы, плесени, пылевых клещей и эпидермальных аллергенов), которые считаются релевантными для пациента. В последние десятилетия определение сывороточного IgE проводилось с использованием моноклонального, смешанного моноклонального или поликлонального антисобачьего IgE. Однако из-за более высокой чувствительности и специфичности моноклонального антитела использование поликлональных антител против собачьего IgE заметно сократилось [64; 65]. Другой ветеринарный анализ с использованием уникального рекомбинантного фрагмента внеклеточной части альфа-субъединицы высокоаффинного IgE-рецептора человека (FceRIa) показал сильное сродство к собачьему IgE и отсутствие перекрёстной реакции с IgG [66; 67]. Две версии внутриклинического иммуноблот-анализа Allercept E-screen© (Heska Corp, Ft Collins, CO, США) были валидированы для выявления аллергенспецифичного IgE в сыворотках собак [68; 69]. Этот тест использовался в качестве скринингового теста, чтобы помочь ветеринару определить возможность проведения полного панельного ASIS или IDT с использованием смесей аллергенов блох, пылевых клещей и пыльцы. Иммуноблоттинг Allercept E-screen© позволил с высокой вероятностью предсказать, будут ли IDT и/или ASIS отрицательными или положительными [68]. Однако этот тест является скрининговым тестом с использованием смешанного аллергена, который не позволяет идентифицировать индивидуальный аллерген-возбудитель и поэтому не заменяет полное тестирование IDT или ASIS. В настоящее время многие другие компании предлагают серологическое тестирование, специфичное для аллергена, но, основываясь на недавнем исследовании, результаты тестов не очень хорошо согласуются между лабораториями [70].
Являются ли IDT и ASIS надёжными для выявления кожных нежелательных реакций на пищу у собак?
Многие лаборатории предлагают панели IgE, специфичные для пищевых аллергенов, несмотря на то, что несколько исследований показали, что IDT и ASIS ненадёжны в диагностике нежелательных реакций на пищу [49; 71–73]. IDT, например, обладает очень низкой чувствительностью (10–33%) и высокой вариабельной специфичностью (50–95%) [49]. Таким образом, стоит усилить концепцию о том, что IDT и ASIS не должны использоваться для постановки диагноза нежелательных реакций на пищу.
Некоторые многообещающие результаты были получены при тестировании пластыря на пищевые компоненты [74], но на данный момент метод тестирования находится на экспериментальной стадии и потребует дальнейшей оценки.
Влияют ли какие-либо лекарства на IDT и/или ASIS?
При проведении IDT необходимо тщательно учитывать назначение препаратов, которые могут ингибировать высвобождение гистамина и, возможно, других медиаторов воспаления, вызывая ложноотрицательные результаты. Фактически антигистаминные препараты, глюкокортикоиды, прогестагенные соединения, 
2-адренергические агонисты, бронходилататоры, трициклические антидепрессанты могут влиять на IDT [49]. Напротив, кетоконазол, незаменимые жирные кислоты, циклоспорин и оклацитиниб, по-видимому, меньше влияют на IDT [75–78]. Аналогичным образом, некоторые седативные средства не следует использовать для успокоения пациента, такие как оксиморфон, кетамин/диазепам, ацепромазин и морфин [79]. Напротив, ксилазина гидрохлорид, медетомидин (дексмедетомидин), тилетамин/золазепам, тиамилал, галотан, изофлуран и метоксифлуран могут быть безопасно использованы [49]. Рекомендации по применению пропофола при IDT все ещё противоречивы. В одном исследовании пропофол снижал реакцию на гистамин, в то время как в более недавнем исследовании у собак с атопией реакции IDT были усилены [80; 81].
В недавнем обзоре, основанном на фактических данных, оценивалось время отмены IDT и ASIS широко используемых противовоспалительных препаратов [46]. Хотя сроки отмены могут варьироваться в зависимости от продолжительности лечения, дозировки и типа лекарств, были предложены следующие сроки отмены обычных противовоспалительных препаратов [46]:
• IDT: антигистаминные препараты (7 дней), пероральные глюкокортикоиды короткого действия (14 дней), инъекционные глюкокортикоиды длительного действия (не менее 28 дней), местные глюкокортикоиды (14 дней), циклоспорин (вероятно, не требуется), пентоксифиллин (отсутствует);
• ASIS: антигистаминные препараты (вероятно, не требуются), пероральные глюкокортикоиды короткого действия (отсутствуют), инъекционные глюкокортикоиды длительного действия (<28 дней), местные глюкокортикоиды (отсутствуют), циклоспорин (отсутствует).
Итоги
Этот обзор показывает, что АД у собак является сложным заболеванием, которое часто может быть связано с другими зудящими заболеваниями. Из-за отсутствия точного коммерческого теста на аллергию для диагностики АД у собак требуется клинический диагноз, основанный на исключении других возможных зудящих дерматозов и критериев Фавро. Поскольку нежелательные реакции на корм часто неотличимы от АДС, при наличии постоянного зуда и/или сопутствующих желудочно-кишечных симптомов требуются надлежащим образом выполненные испытания с элиминационной диетой. Тесты на аллергию следует использовать только после постановки клинического диагноза АД у собак, основной целью которого является выявление потенциальных аллергенов-возбудителей, которых можно избежать или лечить с помощью АСИТ. Необходимы дополнительные исследования для дальнейшей оценки фенотипических различий АД у собак других пород, оценки аллергенов, поражающих определённые участки тела, и улучшения методов тестирования.
Сокращения
АД — атопический дерматит
АДС — атопический дерматит у собак
ICADA — Международный комитет по аллергическим заболеваниям у животных
IDT — внутрикожное тестирование
ASIS — серологический анализ на аллерген-специфический IgE
БАД — блошиный аллергический дерматит
АСИТ — аллерген-специфическая иммунотерапия
Литература
1. Halliwell R. Revised nomenclature for veterinary allergy. Vet Immunol Immunopathol. 2006;114(3–4):207–8.
2. DeBoer DJ, Hillier A. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (XV): fundamental concepts in clinical diagnosis. Vet Immunol Immunopathol. 2001;81(3–4):271–6.
3. Wilhem S, Kovalik M, Favrot C. Breed-associated phenotypes in canine atopicdermatitis. Vet Dermatol. 2011;22(2):143–9.
4. Nuttall T. The genomics revolution: will canine atopic dermatitis be predictable and preventable? Vet Dermatol. 2013;24(1):10–8. e13–14.
5. Favrot C, Steffan J, Seewald W, Picco F. A prospective study on the clinical featuresof chronic canine atopic dermatitis and its diagnosis. Vet Dermatol. 2010;21(1):23–31.
{Источники 6–39 относятся к 1 части статьи и опубликованы в СВМ 1/24}
40. Rosser Jr EJ. Diagnosis of food allergy in dogs. J Am Vet Med Assoc. 1993;203(2):259–62.
41. Jackson HA, Hammerberg B. The clinical and immunological reaction to a flavouredmonthly oral heartworm prophylatic in 12 dogs with spontaneous food allergy. Vet Dermatol. 2002;13(4):218.
42. Zur G, Ihrke PJ, White SD, Kass PH. Canine atopic dermatitis: a retrospective study of 266 cases examined at the University of California, Davis, 1992–1998. Part I. Clinical features and allergy testing results. Vet Dermatol. 2002;13(2):89–102.
43. Griffin CE, DeBoer DJ. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (XIV): clinical manifestations of canine atopic dermatitis. Vet Immunol Immunopathol. 2001;81(3–4):255–69.
44. Bensignor E, Marignac G, Crosaz O, Cavana P. Pruritus in dogs. Veterinarydermatology. 2013;24(2):292.
45. Miller Jr WH, Griffin CE. Campbell KL. In: Small Animal Dermatology. 7th ed. St. Louis: W. B. Elsevier; 2013. p. 363–431.
46. Olivry T, Saridomichelakis M, International Committee on Atopic Diseases of A. Evidence-based guidelines for anti-allergic drug withdrawal times before allergen-specific intradermal and IgE serological tests in dogs. Vet Dermatol. 2013;24(2):225-e249.
47. Hensel P, Bauer CL, Austel M, Keys D. Serological and intradermal test reactivity patterns among six species of house dust and storage mites. Vet Dermatol. 2009;20:228.
48. Marsella R, Sousa CA, Gonzales AJ, Fadok VA. Current understanding of thepathophysiologic mechanisms of canine atopic dermatitis. J Am Vet Med Assoc. 2012;241(2):194–207.
49. Hillier A, DeBoer DJ. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (XVII): intradermal testing. Vet Immunol Immunopathol. 2001;81(3–4):289–304.
50. Hensel P, Zabel S, Okunaka N. Differences in skin test reactivity of 59 allergens tested with two different test concentration in 269 atopic dogs. Vet Dermatol. 2012;23 Suppl 1:60.
51. Hensel P, Austel M, Medleau L, Zhao Y, Vidyashankar A. Determination of thresholdconcentrations of allergens and evaluation of two different histamine concentrationsin canine intradermal testing. Vet Dermatol. 2004;15(5):304–8.
52. Bauer CL, Hensel P, Austel M, Keys D. Determination of irritant thresholdconcentrations to weeds, trees and grasses through serial dilutions in intradermaltesting on healthy clinically nonallergic dogs. Vet Dermatol. 2010;21(2):192–7.
53. Suto A, Suto Y, Onohaga N, Tomizawa Y, Yamamoto-Sugawara Y, Okayama T, et al. Food allergens inducing a lymphocyte-mediated immunological reaction incanine atopi-like dermatitis. J Vet Med Sci. 2015;77(2):251–4.
54. Ownby DR. Clinical significance of immunoglobulin E. In: Middleton EJ, Reed CE, Ellis EF, editors. Allergy: Principles andPractice. 5th ed. St. Louis: Mosby; 1998. p. 770–82.
55. Foster AP, Littlewood JD, Webb P, Wood JL, Rogers K, Shaw SE. Comparison of intradermal and serum testing for allergen-specific IgE using a Fcepsilon RIalpha-based assay in atopic dogs in the UK. Vet Immunol Immunopathol. 2003;93(1–2):51–60.
56. Park S, Ohya F, Yamashita K, Nishifuji K, Iwasaki T. Comparison of response toimmunotherapy by intradermal skin test and antigen-specific IgE in canine atopy. J Vet Med Sci. 2000;62(9):983–8.
57. Buckley L, Schmidt V, McEwan N, Nuttall T. Cross-reaction and co-sensitizationamong related and unrelated allergens in canine intradermal tests. Vet Dermatol. 2013;24(4):422–7. e491–422.
58. Marsella R, Saridomichelakis MN. Environmental and oral challenge with storagemites in beagles experimentally sensitized to Dermatophagoides farinae. Veterinarydermatology. 2010;21(1):105–11.
59. Saridomichelakis MN, Marsella R, Lee KW, Esch RE, Farmaki R, Koutinas AF. Assessment of cross-reactivity among five species of house dust and storage mites. Vet Dermatol. 2008;19(2):67–76.
60. Bauer CL, Hensel P, Austel M, Keys D. Determination of irritant threshold concentrations of six house dust and storage mites through serial dilutions in intradermal testing on healthy clinically non-allergic dogs. Vet Dermatol. 2009;20:227.
61. Hensel P. Differences in allergy skin testing among dermatologists within the samegeographical region in the USA. Vet Dermatol. 2012;23 Suppl 1:60.
62. Hubbard TL, White PD. Comparison of subjective and objective intradermal allergy test scoring methods in dogs with atopic dermatitis. J Am Anim Hosp Assoc. 2011;47(6):399–405.
63. Cunha VE, Faccini JL. Use of histamine phosphate for the interpretation ofintradermal skin tests in dogs. Vet Rec. 2009;165(24):723–4.
64. DeBoer DJ, Hillier A. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (XVI): laboratory evaluation of dogs with atopic dermatitis with serum-based “allergy”tests. Vet Immunol Immunopathol. 2001;81(3–4):277–87.
65. Saevik BK, Ulstein TL, Larsen HJ. Evaluation of a commercially available enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of allergen-specific IgE antibodies indogs. Res Vet Sci. 2003;74(1):37–45.
66. Wassom DL, Grieve RB. In vitro measurement of canine and feline IgE: a review of FceR1a-based assays for detection of allergen-reactive Ig E. Vet Dermatol. 1998;9:173–8.
67. Stedman K, Lee K, Hunter S, Rivoire B, McCall C, Wassom D. Measurement of canineIgE using the alpha chain of the human high affinity IgE receptor. Vet Immunol Immunopathol. 2001;78(3–4):349–55.
68. Olivry T, Jackson HA, Murphy KM, Tater KC, Roberts M. Evaluation of a point-of-care immunodot assay for predicting results of allergen-specific intradermal andimmunoglobulin E serological tests. Vet Dermatol. 2005;16(2):117–20.
69. Olivry T, Paps J. Evaluation of the agreement between allergen-specific intradermalor IgE serological tests and a point-of-care immunodot assay in dogs with atopicdermatitis. Vet Dermatol. 2011;22(3):284–5.
70. Plant JD, Neradelik MB, Polissar NL, Fadok VA, Scott BA. Agreement betweenallergen-specific IgE assays and ensuing immunotherapy recommendations fromfour commercial laboratories in the USA. Vet Dermatol. 2014;25(1):15-e16.
71. Jeffers JG, Shanley KJ, Meyer EK. Diagnostic testing of dogs for foodhypersensitivity. J Am Vet Med Assoc. 1991;198(2):245–50.
72. Mueller R, Tsohalis J. Evaluation of serum allergen-specific IgE for the diagnosis offood adverse reactions in dogs. Vet Dermatol. 1998;9(3):167–71.
73. Jackson HA, Jackson MW, Coblentz L, Hammerberg B. Evaluation of the clinical andallergen specific serum immunoglobulin E responses to oral challenge withcornstarch, corn, soy and a soy hydrolysate diet in dogs with spontaneous foodallergy. Vet Dermatol. 2003;14(4):181–7.
74. Johansen C, Mariani C, Mueller RS. Evaluation of patch testing with proteins, carbohydrates and commercial foods for diagnosis of canine adverse food reactions. Vet Dermatol. 2013;24:385.
75. Marsella R, Kunkle GA, Vaughn DM, MacDonald JM. Double-blind pilot study on theeffects of ketoconazole on intradermal skin test and leukotriene C4 concentration inthe skin of atopic dogs. Vet Dermatol. 1997;8:3–10.
76. Bond R, Lloyd DH, Craig M. The effects of essential fatty acid supplementation onintradermal test reactivity in atopic dogs: a preliminary study. Veterinarydermatology. 1993;4:191–7.
77. Goldman C, Rosser Jr E, Petersen A, Hauptman J. Investigation on the effects ofciclosporin (Atopica) on intradermal test reactivity and allergen-specific immunoglobulin (IgE) serology in atopic dogs. Vet Dermatol. 2010;21(4):393–9.
78. Aleo MM, Galvan EA, Fleck TJ, Humphrey WR, Coscarelli EM, Mahabir SP, et al. Effects of oclacitinib and prednisolone on skin test sensitivity. Vet Dermatol. 2013;24(3):297.
79. Martin DD, Martin AL. Pain management and anesthesia in veterinary dermatology. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2006;36(1):1–14.
80. Kennis RA, Robertson SA, Rosser Jr EJ, Hauptman JG. Effects of propofol anesthesiaon intradermally injected histamine phosphate in clinically normal dogs. Am J Vet Res. 1998;59(1):7–9.
81. Graham LF, Torres SM, Jessen CR, Horne KL, Hendrix PK. Effects of propofol-induced sedation on intradermal test reactions in dogs with atopic dermatitis. Vet Dermatol. 2003;14(3):167–76.
СВМ № 2/2024
Источник: BMC Veterinary Research (2015) 11:196. © 2015 Hensel et al. Open Access: this article is distributed under the terms of the Creative Commons Attribution 4.0 International License , which permits unrestricted use, distribution, and reproduction in any medium, provided you give appropriate credit to the original author(s) and the source, provide a link to the Creative Commons license, and indicate if changes were made.
Вам также могут быть интересны статьи:
Взаимосвязь микробиома кишечника с развитием атопического дерматита у собак. Обзор
Атопический дерматит у собак. Основополагающие аспекты
Одновременная медикаментозная коррекция атопического кожного синдрома кошек и гипертиреоза
Малассезиозный дерматит. Причины, диагностика, лечение
