Поиск
Главная » Без рубрики » Гистологические находки в носовой полости у бессимптомных контрольных собак и собак с хроническим воспалительным ринитом

Гистологические находки в носовой полости у бессимптомных контрольных собак и собак с хроническим воспалительным ринитом

Хронический воспалительный ринит — одна из наиболее частых причин длительных выделений из носа и чихания у собак. В исследовании сравнили гистологические находки в биоптатах носовой полости собак с ринитом и бессимптомных животных, оценив воспалительные клетки, состояние эпителия, бокаловидных клеток и ресничек.
гистология носовой полости собак

Henriikka Neittaanmäki1, Hanna-Maaria Javela1, Essi Kuningas1, Katja Koskinen1, Anni Tilamaa1, Minna Rajamäki1, Sanna Viitanen1 and Niina Airas1
1 University of Helsinki, Helsinki, Finland


Аннотация

Хронический воспалительный ринит (ХВР) — одна из наиболее частых причин хронических назальных симптомов у собак. Несмотря на исследовательские усилия, этиология ХВР остаётся в значительной степени невыясненной. Целью нашего исследования было описание гистологических находок в назальных биоптатах контрольных собак без признаков заболевания носа в сравнении с собаками с ХВР. Исследуемые группы включали контрольных собак, эвтаназированных по причинам, не связанным с данным исследованием (n = 20), и ранее собранные, архивированные назальные биоптаты от собак с диагностированным ХВР (n = 20). Диагноз ХВР основывался на клинической картине, данных компьютерной томографии, риноскопии и гистопатологических находках, указывающих на ХВР. В назальных биоптатах оценивали количество воспалительных клеток, а также изменения эпителия слизистой оболочки и ассоциированной собственной пластинки. Количество лимфоцитов и плазматических клеток (P < 0,0001), нейтрофилов (P < 0,0001) и эозинофилов (P = 0,0016) в собственной пластинке, а также мукозальных интраэпителиальных лейкоцитов (P < 0,0001) было достоверно выше у собак с ХВР по сравнению с контрольными собаками. Небольшая популяция лейкоцитов также наблюдалась у контрольных собак, что, вероятно, представляет физиологическую популяцию иммунных клеток. Тип воспаления при ХВР не является исключительно лимфоплазмоцитарным, поскольку у собак с ХВР также выявлялись нейтрофилы и эозинофилы. Эпителий слизистой оболочки был толще (P = 0,006), а количество видимых бокаловидных клеток (P < 0,001) было снижено у собак с ХВР; у некоторых собак отмечалась мультифокальная утрата ресничек, что может представлять собой форму респираторной эпителиальной метаплазии. Эпителиальные изменения, вероятно, играют роль в патофизиологии ХВР и вносят вклад в клинические проявления.

Ключевые слова: собаки, хронический воспалительный ринит, гистопатология, идиопатический воспалительный ринит, лимфоплазмоцитарный ринит, заболевание носа


Введение

Хронический воспалительный ринит (ХВР, также называемый идиопатическим лимфоплазмоцитарным ринитом собак) является одной из наиболее частых причин хронических назальных симптомов у собак и диагностируется в 24–39% случаев [17; 24; 32]. Наиболее распространённые клинические признаки включают хронические истечения из носа, чаще всего двусторонние и слизисто-гнойные, а также чихание [16; 37]. У поражённых собак описана деструкция носовых раковин различной степени [16; 32; 37]. Диагноз ХВР устанавливается путём тщательного клинического обследования для исключения других причин хронических назальных симптомов, таких как неоплазия носовой полости, инфекционные этиологии и стоматологические заболевания, и путём выявления преимущественно лимфоплазмоцитарного воспаления в назальных биоптатах [29; 37]. ХВР — это фрустрирующее, в большинстве случаев неизлечимое заболевание, не имеющее стабильно эффективных методов лечения, что сказывается на качестве жизни как собаки, так и владельца.

Несмотря на исследовательские усилия, этиология ХВР остаётся в значительной степени невыясненной. Предполагается, что в основе заболевания лежит дисрегуляция местной иммунной системы, инициированная неизвестным повреждающим фактором и приводящая к повреждению слизистой оболочки, дальнейшему воспалению и вторичным инфекциям [7], однако доказательства, подтверждающие эти предположения, отсутствуют. У собак с ХВР по сравнению со здоровыми контрольными собаками было продемонстрировано повышение экспрессии толл-подобных рецепторов 1, 2 и 6–8 наряду с отчётливыми профилями цитокинов и хемокинов [18; 23]. Иммунный ответ при ХВР характеризуется повышением экспрессии мРНК интерлейкина-5, что отличает его от иммунного ответа при синоназальном аспергиллёзе [23; 35]. Роль специфических патогенов была изучена, и Bartonella sp., Mycoplasma sp. и Chlamydophila sp. не были обнаружены в назальных биоптатах поражённых собак [12; 38]. Высокие уровни грибковой ДНК были выявлены в назальных биоптатах собак с ХВР, что рассматривалось как возможный предрасполагающий или поддерживающий фактор; однако накопление или задержка грибов, вторичные по отношению к воспалению, также могут объяснять обнаруженную грибковую ДНК [38]. ХВР может быть многофакторным заболеванием, и как одонтогенные инфекции, так и заболевания желудочно-кишечного тракта или гастроэзофагеальный рефлюкс предположительно вносят вклад в развитие болезни [8; 10; 29]. Лучшее понимание этиологии ХВР могло бы способствовать идентификации возможных факторов риска и планированию терапевтических вмешательств.

Гистопатологические находки при ХВР включают инфильтрацию фиброзной стромы лимфоцитами и плазматическими клетками и, в меньшей степени, нейтрофилами, а также вариабельную гиперплазию, эрозию или плоскоклеточную метаплазию поверхностного эпителия [7]. Воспалительные находки при ХВР не являются патогномоничными, поскольку сходные гистопатологические изменения были описаны как при ХВР, так и при синоназальном аспергиллёзе [9]. Кроме того, воспалительные изменения не всегда коррелируют с клиническими признаками, поскольку слабовыраженные гистологические изменения могут сохраняться после лечения даже при полном клиническом разрешении признаков ХВР [13]. Насколько нам известно, отсутствуют исследования, описывающие гистологические находки в слизистой оболочке носовой полости здоровых собак. Поскольку носовая полость постоянно контактирует с вдыхаемыми микробами и частицами, представляет интерес описание назальной гистологии у бессимптомных собак и сравнение находок с таковыми при ХВР для лучшего понимания клинической значимости патофизиологических изменений, происходящих при ХВР.

Целью нашего исследования было описание гистологических находок в назальных биоптатах собак без признаков заболевания носа в сравнении с собаками с ХВР.

Материалы и методы

Формирование выборки

Был проведён ретроспективный анализ данных частных собак, тщательно обследованных по поводу хронических назальных симптомов в Учебном ветеринарном госпитале Университета Хельсинки в период с 2013 по 2023 год, и в исследование было включено 20 собак с диагностированным ХВР. В исследовании использовались архивированные залитые в парафин биоптаты от собак с диагностированным ХВР. Кроме того, проспективно были получены назальные биоптаты от частных контрольных собак без назальных симптомов, эвтаназированных по причинам, не связанным с данным исследованием, и переданных для научных целей в период с марта 2023 по ноябрь 2023 года.

Все собаки с ХВР прошли тщательное клиническое обследование, включая компьютерную томографию (КТ) с йодным контрастированием и без него, а также антеградную и ретроградную риноскопию с взятием биопсии под общей анестезией. Биоптаты получали либо вслепую, либо под эндоскопическим контролем из обеих носовых полостей с использованием одноразовых биопсийных щипцов. Диагноз ХВР устанавливался при наличии хронических назальных симптомов (истечения из носа +/− чихание или обратное чихание) продолжительностью не менее двух месяцев, результатах КТ и риноскопии, указывающих на ХВР, преимущественно лимфоплазмоцитарном воспалении в назальных биоптатах и исключении других причин назальных симптомов [37]. Собаки исключались, если воспаление было преимущественно эозинофильным, истечения из носа представляли собой исключительно эпистаксис, или если данные КТ указывали на объёмные образования или воспаление корней зубов верхней челюсти, а также в случаях обнаружения инородных тел или грибковых бляшек при КТ или риноскопии. Кроме того, исключались собаки с неадекватными назальными биоптатами. Биоптаты считались неадекватными, если они были очень маленькими или если диагностическое качество было низким из-за наличия артефактов. Для включения требовалось не менее двух полей зрения при большом увеличении (2 × 0,237 мм²) с интактным эпителием слизистой оболочки и собственной пластинкой без артефактов. После первичного анализа было рассмотрено 33 собаки с ХВР, и в итоге в исследование было включено 20 собак, наилучшим образом соответствующих критериям.

Всех владельцев бессимптомных контрольных собак опрашивали на предмет возможных назальных симптомов и сопутствующего лечения на момент эвтаназии, и ответы регистрировались. Собаки включались в исследование при отсутствии всех назальных симптомов (истечения из носа, чихание и обратное чихание) и при отсутствии лекарственных препаратов, способных повлиять на воспалительную реакцию (антимикробные средства, нестероидные противовоспалительные препараты и кортикостероиды). Назальные биоптаты получали вслепую сразу после эвтаназии из среднего отдела обеих носовых полостей одноразовыми биопсийными щипцами. После взятия биоптатов проводили полное посмертное исследование, включая оценку всей носовой полости для исключения субклинического заболевания носа.

Оценка данных компьютерной томографии

КТ-сканы оценивались и классифицировались одним радиологом (AT). Плотность мягких тканей, указывающая на секрет в носовой полости, и деструкция носовых раковин оценивались как отсутствующие, лёгкие, умеренные или тяжёлые (0–3) в ростральных, средних и каудальных отделах обеих носовых полостей. Общий балл (0–18) каждой переменной использовался для статистического анализа.

Гистология

Назальные биоптаты фиксировали в 10% нейтральном забуференном формалине, проводили стандартную обработку и окрашивали гематоксилином и эозином, трихромом по Массону, реактивом Шиффа (PAS) и по Грамму. Каждый биоптат оценивали Niina Airas (сертифицированный патолог) и Henriikka Neittaanmäki. На момент гистологической оценки патологи были ослеплены в отношении данных пациентов.

В слизистой оболочке носа подсчитывали количество воспалительных клеток, включая эпителий слизистой оболочки и ассоциированную собственную пластинку. Количество клеток в собственной пластинке подсчитывали как лимфоциты и плазматические клетки, нейтрофилы и эозинофилы для трёх полей зрения при большом увеличении (40×, 0,237 мм²) с каждой стороны носовой полости. Общее количество интраэпителиальных лейкоцитов слизистой оболочки подсчитывали в тех же полях. Три поля выбирали случайным образом из областей наилучшего диагностического качества. Оценку различных типов интраэпителиальных воспалительных клеток проводили путём подсчёта 10 случайно выбранных интраэпителиальных воспалительных клеток на собаку. Толщину эпителия оценивали в тех же трёх полях зрения при большом увеличении, что и подсчёт воспалительных клеток, и рассчитывали как количество слоёв эпителиальных клеток. Далее оценивали собственную пластинку, включая железы слизистой оболочки. Образцы оценивали на наличие отёка в собственной пластинке, лимфоидной гиперплазии и фиброза. Эпителий слизистой оболочки оценивали на предмет эпителиального повреждения и количества бокаловидных клеток. Наличие грибов, бактерий, внутрисосудистых лейкоцитов и васкулита регистрировали как присутствующее или отсутствующее. Наличие хрящевой и/или костной ткани регистрировали, а также оценивали на предмет воспалительных и структурных изменений. Регистрировали наличие слизи. Из-за малого размера и/или повреждения биоптатов оценка трёх репрезентативных полей при большом увеличении была невозможна у трёх собак с ХВР и 1 контрольной собаки, поэтому вместо этого оценивали два поля. У этих собак расчётное количество клеток для трёх полей при большом увеличении вычисляли на основе доступных полей (среднее количество клеток в доступных полях умножали на три).

Основа системы градации представлена в таблице 1, а подробное описание критериев градации — в дополнительной таблице S1. Для каждой переменной в статистическом анализе использовали среднее значение из двух носовых полостей.

Таблица 1. Гистопатологическая градация образцов назальной биопсии

ФакторГрадацияОснование градации
Лейкоциты собственной пластинки слизистой Лимфоциты—
плазматические клетки Нейтрофилы Эозинофилы
НепрерывнаяАбсолютное число / 3 HPF (0,237 мм²)
Интраэпителиальные лейкоциты слизистойНепрерывнаяАбсолютное число / 3 HPF и дифференцировка 10 клеток на образец
Толщина эпителияНепрерывнаяКоличество слоёв эпителиальных клеток, среднее по 3 HPF
Отёк в собственной пластинке0 — отсутствует;
1 — слабый (< 25%);
2 — умеренный
(25–50%);
3 — выраженный
(> 50%)
Доля площади образца с отёком
Лимфоидная
гиперплазия
0 — отсутствует;
1 — слабая (< 25%);
2 — умеренная
(25–50%);
3 — выраженная
(> 50%)
Доля площади образца с лимфоидной гиперплазией
Фиброз0 — отсутствует;
1 — слабый;
2 — умеренный;
3 — выраженный
Наличие фиброза на срезе, окрашенном трихромом по Массону, на основании ширины фиброзной стромы и наличия атрофии мукозальных желёз
Повреждение эпителия0 — отсутствует;
1 — эрозия;
2 — изъязвление
(1) Слабое повреждение эпителия,
(2) повреждение, распространяющееся через базальный слой и вызывающее локальное воспаление
Бокаловидные клетки0 — отсутствуют;
1 — < 5 на HPF;
2 — 5–10 на HPF;
3 — > 10 на HPF
Частота видимых бокаловидных клеток на HPF по всему образцу при PAS-окраске
Грибы0 — отсутствуют;
1 — присутствуют
Наличие грибов при PAS-окраске
Бактерии0 — отсутствуют;
1 — присутствуют
Наличие бактерий при окраске по Граму
Внутрисосудистые лейкоциты0 — отсутствуют;
1 — присутствуют
Заполнение капилляров лейкоцитами
Васкулит0 — отсутствует;
1 — присутствует
Воспалительные клетки в стенках капилляров с повреждением эндотелия и окружающим отёком
Хрящевая/костная ткань0 — отсутствует;
1 — присутствует, норма;
2 — присутствует, патология
Наличие хрящевой/костной ткани и оценка воспалительных/структурных изменений
Слизь0 — отсутствует;
1 — присутствует
Наличие слизи и оценка возможного воспалительного инфильтрата

HPF — high-power field (поле зрения при большом увеличении); PAS — periodic acid-Schiff.

Дополнительная таблица S1
Дополнительная таблица S1. Подробная гистопатологическая градация образцов назальной биопсии
Показатель Описание и градация
Отек в собственной пластинке слизистой оболочки Гистологическая оценка отека в собственной пластинке слизистой оболочки носа: (a) отсутствует или (b) присутствует у собак с хроническим воспалительным ринитом и без него. Окраска гематоксилином и эозином. Градация основана на доле площади образца с отеком: отсутствует (0), слабый (< 25 %), умеренный (25–50 %) или выраженный (> 50 %).
(a) Область без отёка
(b) Область с отёком
Лимфоидная гиперплазия Гистологический образец слизистой оболочки носа собаки: лимфоидная гиперплазия. Окраска гематоксилином и эозином. Градация основана на доле площади образца с лимфоидной гиперплазией: отсутствует (0), слабая (< 25 %), умеренная (25–50 %) или выраженная (> 50 %).
Область с лимфоидной гиперплазией
Фиброз Наличие фиброза в гистологических образцах слизистой оболочки носа собак с хроническим воспалительным ринитом и без него, градация: (a) отсутствует, (b) слабый, (c) умеренный и (d) выраженный — на основании ширины фиброзной стромы и наличия атрофии мукозальных желез. Окраска трихромом по Массону.
(a) Отсутствует: ширина до 2 фибробластов, нормальные мукозальные железы
(b) Слабый: ширина до 5 фибробластов, нормальные мукозальные железы
(c) Умеренный: ширина до 10 фибробластов, слабая потеря мукозальных желез
(d) Выраженный: ширина > 10 фибробластов, выраженное замещение мукозальных желез фиброзным матриксом
Повреждение эпителия Повреждение эпителия в гистологических образцах слизистой оболочки носа собак с хроническим воспалительным ринитом и без него, градация: (a) отсутствует, (b) эрозия и (c) изъязвление — на основании тяжести эпителиального повреждения. Окраска гематоксилином и эозином.
(a) Отсутствует: нормальный эпителий
(b) Эрозия: слабое повреждение эпителия
(c) Изъязвление: повреждение, распространяющееся через базальный клеточный слой и вызывающее локальное воспаление
Бокаловидные клетки Наличие видимых бокаловидных клеток в гистологических образцах слизистой оболочки носа собак с хроническим воспалительным ринитом и без него, градация: (a) 0 (отсутствуют), (b) 1 (< 5 на поле зрения при большом увеличении [HPF]), (c) 2 (5–10 на HPF) и (d) 3 (> 10 на HPF) — на основании частоты видимых бокаловидных клеток на HPF (0,237 мм²) по всему образцу. Окраска реактивом Шиффа (PAS).
(a) 0: отсутствуют
(b) 1: < 5 на HPF
(c) 2: 5–10 на HPF
(d) 3: > 10 на HPF

Иммуногистохимия

Иммуногистохимическое исследование проводили для дальнейшей характеристики популяции назальных лимфоцитов. Назальные биоптаты сначала инкубировали в течение 20 минут при 99°C в 10 мМ цитратном буфере (pH 6) для термической демаскировки антигенов. Эндогенную пероксидазу блокировали погружением в 3% перекись водорода на 10 минут, а неспецифическое связывание антител блокировали с использованием 10% бычьего сывороточного альбумина (BSA, Merck, Дармштадт, Германия) в фосфатно-солевом буфере. Первичные антитела: поликлональные кроличьи CD3 (1:200, A0452, Agilent/Dako) и моноклональные мышиные CD79a (1:400, MCA2538H, AbDSerotec) инкубировали при комнатной температуре в течение 60 минут. Вторичные антитела, полимер-связанные с HRP (BrightVision + Poly-HRP kit; ImmunoLogic, Дуйвен, Нидерланды), инкубировали во влажной камере в течение 30 минут при комнатной температуре, и иммунореакцию визуализировали с помощью Bright DAB Substrate kit (ImmunoLogic, Дуйвен, Нидерланды). Ткани собак из рутинных диагностических случаев использовали в качестве положительного контроля, а отсутствие неспецифического связывания демонстрировали путём исключения первичного антитела.

Обе иммуногистохимические реакции оценивали в тех же областях, где присутствовали лимфоциты. Т- и В-лимфоциты подсчитывали для двух полей зрения при большом увеличении (0,237 мм²) с каждой стороны носа.

Статистический анализ

Нормальность данных исследовали с помощью критерия Шапиро-Уилка и визуальной оценки графиков нормальности. Различия между собаками с ХВР и контрольной группой оценивали с помощью U-критерия Манна-Уитни. Корреляции между клиническими и гистопатологическими переменными у собак с ХВР оценивали с использованием коэффициентов корреляции Спирмена. Умеренной считалась корреляция при r = 0,38–0,67 и сильной — при r = 0,68–0,87. Статистический анализ проводили с использованием коммерческого статистического программного обеспечения (GraphPad Prism 10.1.2, Dotmatics, Бостон, Массачусетс). Значения P < 0,05 считались статистически значимыми.

Этическое одобрение и согласие владельцев

Использование избыточных залитых в парафин биоптатов от собак с ХВР не подлежало этической экспертизе. На Факультете ветеринарной медицины Университета Хельсинки Отделение патологии и паразитологии сохраняет все последующие права на гистопатологические образцы, представленные для анализа. Клиенты информируются об этой политике факультета в письменной форме. Использование тел животных, принадлежащих клиентам и переданных для научных целей, было одобрено Комитетом по этике исследований кампуса Виикки Университета Хельсинки, Финляндия (Заключение 17/2021).

Гистологическая градация для каждой собаки доступна в дополнительной таблице S2, а полные данные, проанализированные в этом исследовании, доступны у соответствующего автора по обоснованному запросу.

Результаты

Исследуемая популяция

Исследуемые группы включали ранее собранные архивированные назальные биоптаты от 20 собак с диагностированным ХВР и 20 проспективно собранных контрольных собак без назальных симптомов. Собаки с ХВР были моложе (P = 0,005, медиана возраста = 7,3 года, референсный диапазон [МКР] 6–9,75, диапазон = 2,5–12 лет на момент биопсии), чем контрольные собаки (11,3 года, МКР = 8,1–12,6, диапазон = 4,5–16,8 лет). Собаки с ХВР также были меньше (P = 0,03, медиана массы = 10,1 кг, МКР = 7,3–17,9, диапазон = 6–47,6 кг), чем в контрольной группе (медиана массы = 21,2 кг, МКР = 12,4–31,3, диапазон = 5–54 кг).

Собаки с ХВР включали 7 такс, 4 парсон-рассел-терьеров, 2 уиппетов, 2 беспородных собаки и по одной: цвергпинчер, американская акита, бриар, бордер-колли и средний шпиц. Контрольные собаки включали 6 беспородных собак, 2 таксы, 2 бордер-колли и по одной: карельская медвежья собака, большой вандейский бассет-гриффон, бельгийская овчарка, борзая, гигантский шнауцер, кеесхонд, ротвейлер, исландская овчарка, золотистый ретривер и кавалер-кинг-чарльз-спаниель.

Причина эвтаназии всех контрольных собак не была связана с заболеваниями носа и чаще всего заключалась в ухудшении общего состояния вследствие острого или хронического заболевания. Ни одна из контрольных собак не проявляла назальных симптомов и не получала лекарственных препаратов, способных изменить иммунные реакции. Полное описание демографических данных и клинических признаков собак с ХВР представлено в дополнительной таблице S3, а демографические данные, причина эвтаназии и основной посмертный диагноз контрольных собак — в дополнительной таблице S4.

Дополнительная таблица S3
Дополнительная таблица S3. Сигналемент и клинические признаки собак с хроническим воспалительным ринитом (n = 20)
Воз-раст
(лет)
ПолПородаВес
(кг)
Длит-ть клин. приз.
(мес)
Выд-я из носа
(слизисто-гнойные)
Выд-я из носа
(сероз.)
Чиха-ниеОбрат-ное чиха-ние
18FSПарсон-рассел-терьер9,58xxxx
27,4FSМетис9,25xxxx
38FSПарсон-рассел-терьер10,66xx  
45,5FКарликовый пинчер6,44xx  
57FПарсон-рассел-терьер434xxxx
62,5MПарсон-рассел-терьер6,74xxxx
76MТакса39,86xxxx
88,2FТакса11,512xxxx
96MМетис11,112xxxx
103MБриар3236x   
117,3MУиппет47,68xxxx
1212MNАмериканская акита11,58xxxx
137MБордер-колли21,78xxxx
143,6MТакса62xxxx
1510,5MТакса13,26xx  
1611MТакса147xxxx
177FSПарсон-рассел-терьер8,924xx  
1810FSТакса6,212xxxx
198,4MТакса7,48xx  
208,4MТакса7,136xx  
M = самец, MN = кастрированный самец, F = самка, FS = стерилизованная самка
Дополнительная таблица S4
Дополнительная таблица S4. Сигналемент, причина эвтаназии и основной посмертный диагноз контрольных собак без назальных признаков (n = 20)
Воз-раст
(лет)
ПолПородаВес
(кг)
Причина эвтаназииПосмертный диагноз (основной)
19,2MТакса12,2Уринарные признаки, агрессивностьИнфаркты почек и киста, гиперплазия простаты
213,4MМетис12,5Острое ухудшение, больГемангиосаркома селезенки
34,8MБордер-колли19,2АгрессивностьСперматическая гранулема (эпидидимис)
44,8MКарельская медвежья лайка27,5АгрессивностьХронический лимфоплазмоцитарный тиреоидит
512,7MБольшой Вандейский бассет-грифон28,2Острое ухудшение, асцитАденокарцинома простаты, метастаз
613,8MNБордер-колли15,3НеизвестнаХронический фолликулярный цистит
74,5MБельгийская овчарка32,0НеизвестнаЗначимых изменений не обнаружено
811,5FSРусская борзая36,0Хронические гастроинтести-нальные признакиГистиоцитарная саркома печени
912,1MРизеншнауцер31,8Парез тазовых конечностей, больГистиоцитарная саркома легких
1011,7MNМетис11,9Подозрение на неоплазию щитовидной железыАденокарцинома щитовидной железы
1114,3FКеесхонд16,2Вагинальное и цервикальное образованиеЛейомиома шейки матки
129,0FРотвейлер54,0ОстеоартрозОстеоартроз
1310,5FИсландская овчарка12,8ОстеоартрозОстеоартроз
1411,8MNГолден-ретривер30,8Проблемы с печенью и кожейАтрофия эпидермиса, интерфейс-дерматит
156,6MКавалер-кинг-чарльз-спаниель8,0НеизвестнаЭндокардоз, гидроцефалия
1611,2FSМетис26,4Хронические вестибулярные признакиОпухоль мозжечка (гемистоцитарная астроцитома)
1716,8MМетис32,8НеизвестнаЛокальная аденокарцинома легких
187,2FSМетис23,2Изменение условий жизни владельцаЗначимых изменений не обнаружено
1911,0FSМетис10,0Старость, проблемы со здоровьемЗначимых изменений не обнаружено
2012,5FSТакса5,0Старость, проблемы со здоровьемАтрофия щитовидной железы
M = самец, MN = кастрированный самец, F = самка, FS = стерилизованная самка

Клинические находки

Клинические признаки у собак с ХВР включали истечения из носа у всех собак (серозные 5/20, слизисто-гнойные 19/20; двусторонние 18/20, односторонние 2/20), чихание у 18/20 собак и обратное чихание у 12/20 собак. Медиана продолжительности клинических признаков составила 8 месяцев (МКР = 5,5–12, диапазон = 2–36 месяцев). Тяжесть клинических признаков не была систематически зарегистрирована в историях болезни; поэтому в статистический анализ была включена только продолжительность клинических признаков.

КТ-визуализация выявила отсутствие (3/20), лёгкую (6/20) или умеренную (11/20) плотность мягких тканей, указывающую на секрет в носовой полости, и отсутствие (14/20), лёгкую (4/20) или умеренную (2/20) деструкцию носовых раковин. Данные КТ достоверно не коррелировали с тяжестью воспалительных изменений в назальных биоптатах или с продолжительностью клинических признаков. Риноскопические находки включали нормальную структуру носовых раковин (20/20), назальный секрет (18/20), гиперемию (7/20) и лёгкую деструкцию носовых раковин (3/20). Находки были двусторонними у 18/20 и односторонними у 2/20 собак.

Посмертные находки у контрольных собак включали различные неоплазии, остеоартроз и множество неспецифических изменений (дополнительная таблица S4). Ни у одной из контрольных собак не было макроскопических поражений в носовых полостях.

Гистопатологические находки

Количество лимфоцитов и плазматических клеток (P < 0,0001), нейтрофилов (P < 0,0001) и эозинофилов (P = 0,0016) в собственной пластинке было достоверно выше у собак с ХВР по сравнению с контрольными собаками (илл. 1a–c).

Диаграммы размаха
Илл. 1. Диаграммы размаха («ящик с усами»), представляющие медианы и (референсный диапазон) количества (a) лимфоцитов и плазматических клеток (LP), (b) нейтрофилов (NEU) и (c) эозинофилов (EOS) в собственной пластинке, а также (d) количества интраэпителиальных лейкоцитов (INTRAEP) в трёх случайных полях зрения при большом увеличении в гистологических образцах носовой полости собак с хроническим воспалительным ринитом (CIR, n = 20) и контрольных собак (n = 20). Точками обозначены значения за пределами 10–90 процентилей. Количество клеток достоверно выше при ХВР по сравнению с контролем.

Основной популяцией воспалительных клеток при ХВР во всех образцах были лимфоциты и плазматические клетки. Тем не менее, наблюдалась значительная вариабельность в тяжести воспалительной инфильтрации как у собак с ХВР, так и у контрольных (илл. 2). Лимфоциты и плазматические клетки обнаруживались в собственной пластинке всех контрольных собак и присутствовали двусторонне у всех собак, хотя количество клеток различалось (>50%) между левой и правой сторонами у 6/20 собак с ХВР и у 7/20 контрольных собак. Лимфоциты и плазматические клетки были распределены диффузно, но чаще всего встречались в поверхностном слое собственной пластинки непосредственно под эпителием, с мультифокальной вариацией, особенно у собак с ХВР. Нейтрофилы присутствовали у всех собак с ХВР и у 19/20 контрольных собак, у 11 из которых был только 1 нейтрофил в трёх полях зрения при большом увеличении. Эозинофилы присутствовали у 15/20 собак с ХВР и 6/20 контрольных собак. Умеренные положительные корреляции были обнаружены между количеством лимфоцитов и плазматических клеток и количеством нейтрофилов (r = 0,621, P = 0,003), а также между количеством нейтрофилов и эозинофилов (r = 0,547, P = 0,013).

Гистология носовой полости собаки
Илл. 2. Гистологические образцы носовой полости (a) контрольной собаки без назальных симптомов и (b–d) собак с хроническим воспалительным ринитом. Наблюдается вариабельное количество лейкоцитов в собственной пластинке (сходное на a и b, увеличивающееся на c и d) и в эпителии слизистой оболочки, отёк в собственной пластинке (c) и внутрисосудистые нейтрофилы (d). Окраска гематоксилином и эозином

Количество интраэпителиальных воспалительных клеток слизистой оболочки было выше у собак с ХВР (P < 0,0001, илл. 1d) и положительно коррелировало с воспалением в собственной пластинке (лимфоциты и плазматические клетки r = 0,676, P = 0,001; нейтрофилы r = 0,747, P < 0,0001; эозинофилы r = 0,496, P = 0,0026) и толщиной эпителия (r = 0,541, P = 0,0014). У собак с ХВР 91/200 (45%) оценённых интраэпителиальных воспалительных клеток были лимфоцитами и 109/200 (55%) — нейтрофилами, тогда как у контрольных собак 184/200 (92%) были лимфоцитами и 16/200 (8%) — нейтрофилами. Интраэпителиальные нейтрофилы положительно коррелировали с нейтрофилами в собственной пластинке (r = 0,489, P = 0,029) у собак с ХВР. Интраэпителиальные эозинофилы не были обнаружены.

Все внутрисосудистые лейкоциты были идентифицированы как нейтрофилы (илл. 2d), поэтому далее используется термин «внутрисосудистые нейтрофилы». Внутрисосудистые нейтрофилы (P < 0,001) и васкулит (P = 0,009) также чаще встречались при ХВР; они присутствовали у 15/20 и 6/20 собак с ХВР и у 1/20 и 0/20 контрольных собак соответственно. Умеренные корреляции были обнаружены между внутрисосудистыми нейтрофилами и всеми показателями воспалительных клеток в собственной пластинке, включая лимфоциты и плазматические клетки (r = 0,471, P = 0,036), нейтрофилы (r = 0,552, P = 0,012) и эозинофилы (r = 0,652, P = 0,002).

Эпителий слизистой оболочки носа был толще у собак с ХВР, чем у контрольных (P = 0,006, илл. 3a, b).

Гистология носовой полости собаки
Илл. 3. Гистологические образцы носовой полости контрольных собак без назальных симптомов и собак с хроническим воспалительным ринитом (ХВР), демонстрирующие толщину и структуру эпителия слизистой оболочки. (a) Нормальная структура эпителия слизистой оболочки у контрольной собаки без назальных симптомов. Гематоксилин и эозин (HE). (b) Утолщённый эпителий слизистой оболочки с возможной метаплазией и потерей ресничек, отёк в собственной пластинке и реактивный сосуд у собаки с ХВР. HE. (c) Бокаловидные клетки присутствуют в эпителии слизистой оболочки у контрольной собаки. PAS-реакция. (d) Видимые бокаловидные клетки отсутствуют у собаки с ХВР. PAS

Медиана количества слоёв эпителиальных клеток составила 4 (МКР = 3,5–5, диапазон = 3–8) при ХВР и 3 (МКР = 3–4, диапазон = 2–6) у контрольных собак. У собак с ХВР было меньше видимых бокаловидных клеток, чем у контрольных собак (P < 0,001, илл. 3c, d и 4). Фиброз чаще встречался у собак с ХВР (P = 0,052), но это не достигло статистической значимости (илл. 4). Отрицательные корреляции были обнаружены между бокаловидными клетками и толщиной эпителия (r = −0,493, P = 0,027) и между бокаловидными клетками и фиброзом (r = −0,647, P = 0,002): меньшее количество бокаловидных клеток присутствовало при большей толщине эпителия и при более выраженном фиброзе. Мультифокальное отсутствие ресничек наблюдалось у 8/20 собак с ХВР, в то время как реснички были нормальными у 12/20 собак с ХВР и у всех контрольных собак.

собак с хроническим воспалительным ринитом
Илл. 4. Диаграммы размаха («ящик с усами»), представляющие медианы и (референсный диапазон) оценок бокаловидных клеток, фиброза и отёка слизистой оболочки (степень 0–3) в гистологических образцах носовой полости собак с хроническим воспалительным ринитом (n = 20) и контрольных собак (n = 20)

Не было выявлено достоверных различий в отношении отёка собственной пластинки (P = 0,172), эпителиального повреждения (P = 0,403), лимфоидной гиперплазии (P = 0,435) или наличия бактерий между группами (P = 0,685). Лимфоидная гиперплазия присутствовала у 5/20 собак с ХВР и у 3/20 контрольных собак и была лёгкой у всех собак. Корреляция между лимфоидной гиперплазией и возрастом собаки не была обнаружена (r = −0,261, P = 0,267). Бактерии были обнаружены только на поверхности эпителия или отслоившихся частях эпителия у 4/20 собак с ХВР и 3/20 контрольных собак. Умеренные отрицательные корреляции были обнаружены между бактериями и нейтрофилами (r = −0,500, P = 0,025), интраэпителиальными лейкоцитами (r = −0,467, P = 0,038) и толщиной эпителия (r = −0,529, P = 0,016). Положительная корреляция была обнаружена между бактериями и эпителиальным повреждением (r = 0,531, P = 0,016). Грибковые структуры не были обнаружены ни в срезах, окрашенных гематоксилином и эозином или реактивом Шиффа, ни в одном из образцов, что ожидаемо для собак с ХВР на основании диагностических критериев.

Хрящевая/костная ткань присутствовала в биоптатах у 18/20 собак с ХВР и у 20/20 контрольных собак. Воспаление не распространялось на хрящевую/костную ткань ни у одной из собак. Структурных изменений в хрящевой/костной ткани обнаружено не было. Однако они часто присутствовали в виде очень мелких фрагментов, что затрудняло надлежащую оценку их структуры. Слизь присутствовала у 8/20 собак с ХВР и у 4/20 контрольных собак, причём у 2 собак в каждой группе в слизи присутствовали воспалительные инфильтраты. Наличие слизи у собак с ХВР могло быть обусловлено лаважем физиологическим раствором, часто используемым во время риноскопии.

Иммуногистохимические находки

В обеих группах наблюдалась гетерогенная популяция лимфоцитов. У собак с ХВР 52% составляли CD3+ Т-лимфоциты и 48% — CD79a+ В-лимфоциты. У контрольных собак 56% составляли CD3+ Т-лимфоциты и 44% — CD79a+ В-лимфоциты. Т-лимфоциты были локализованы как в эпителии слизистой оболочки, так и в собственной пластинке, тогда как В-лимфоциты находились только в собственной пластинке.

Обсуждение

ХВР — это фрустрирующее клиническое заболевание с плохим ответом на медикаментозное лечение, и лучшее понимание этиологии и патофизиологии является крайне востребованным. Настоящее исследование предоставляет детальное описание гистологических находок в назальных биоптатах контрольных собак без назальных симптомов и описывает изменения, обнаруженные у собак с ХВР, с использованием одинаковых критериев, что позволяет проводить прямое сравнение. Эти данные позволяют точнее оценить, что может считаться нормой в слизистой оболочке носа, дополняют знания о гистопатологических изменениях, развивающихся при ХВР, и в конечном итоге создают основу для будущих этиологических исследований ХВР.

Ранее сообщалось, что ХВР наиболее часто встречается у крупных собак мезоцефалических пород [29; 36; 37]. В противоположность этому, большинство собак с диагностированным ХВР в нашем исследовании принадлежали к мелким породам. Это может отражать изменение характеристик заболевания со временем, поскольку предыдущие исследования были опубликованы почти 20 лет назад, или же в разных географических регионах фенотип заболевания может различаться. Более того, все эти исследования были относительно небольшими, поэтому обнаруженные различия также могут быть случайными. Таксы были чрезмерно представлены (7/20 собак с ХВР) в нашем исследовании, что может подтверждать ранее предполагавшуюся породную предрасположенность [15; 16; 29]. Предполагалось, что чрезмерная представленность ХВР у такс обусловлена периодонтальным заболеванием и долихоцефалической конформацией [15; 29]. Однако все собаки с ХВР с изменениями корней зубов были исключены в нашем исследовании, что указывает на то, что стоматологическое заболевание не является единственной причиной породной предрасположенности к развитию ХВР. Долихоцефалическая конформация может быть связана с ХВР, поскольку 9/20 поражённых собак в нашем исследовании принадлежали к долихоцефалическим породам (такса, уиппет). Контрольные собаки были достоверно старше собак с ХВР, что отражает типичный возраст эвтаназии частных домашних собак, и это могло привести к переоценке возрастных изменений слизистой оболочки носа. Однако авторы считают, что это вряд ли повлияло на результаты данного исследования, поскольку наша контрольная популяция показала минимальные изменения слизистой оболочки носа.

Мы обнаружили лейкоциты в собственной пластинке слизистой оболочки носа в обеих группах. Небольшая популяция лейкоцитов, главным образом лимфоцитов и плазматических клеток, наблюдаемая в собственной пластинке контрольных собак без назальных симптомов, вероятно, представляет физиологическую популяцию иммунных клеток. Это было ожидаемо, поскольку слизистая оболочка носа постоянно находится в прямом контакте с вдыхаемыми микробами и частицами, и эта находка согласуется с предыдущими сообщениями, описывающими небольшое количество лейкоцитов также в здоровой слизистой оболочке носа человека [30]. Количество лимфоцитов и плазматических клеток было заметно увеличено при ХВР. Эта находка согласуется с другими исследованиями, сообщающими о лимфоплазмоцитарном воспалении при ХВР [9; 37]; однако сохранялось перекрытие в количестве лимфоцитов и плазматических клеток между двумя группами, и при ХВР была обнаружена значительная вариабельность в тяжести лимфоплазмоцитарного воспаления. Это может быть вызвано мультифокальным характером поражений, когда биопсия была взята из менее поражённой области, или флуктуацией в естественном течении заболевания. Кроме того, у некоторых собак клинические признаки могут быть вызваны факторами, отличными от воспалительных изменений, поскольку эпителиальные изменения могут вносить вклад в клинические проявления.

Хотя лимфоциты и плазматические клетки были самой большой популяцией воспалительных клеток у собак с ринитом, количество нейтрофилов также было увеличено. Эта находка ранее сообщалась у собак с данным заболеванием и у человека при хроническом риносинусите [21; 23; 37]. Достоверных различий в наличии бактерий между группами не обнаружено, поэтому нам не удалось связать нейтрофильную инфильтрацию с бактериальной инфекцией. Корреляции между нейтрофильной инфильтрацией и эпителиальным повреждением не обнаружено, и количество нейтрофилов отрицательно коррелировало с наличием бактерий. Это были неожиданные находки, поскольку предполагалось, что нейтрофильная инфильтрация сопровождает эпителиальное повреждение [1]. Кроме того, вторичная бактериальная инфекция считалась клинически важной особенностью ХВР, и ответ на антимикробное лечение описывается часто [37]. Эти находки можно объяснить относительно слабовыраженными изменениями у поражённых собак и тем, что наше исследование могло иметь недостаточную мощность для обнаружения этих тонких различий. Более того, мы обнаруживали только видимые бактерии на поверхности эпителия, а известно, что бактерии слизистой оболочки трудно обнаружить традиционными методами [6; 14]. Таким образом, роль возможных бактериальных инфекций слизистой оболочки не может быть исключена в нашем исследовании и должна быть дополнительно изучена молекулярными методами с лучшей чувствительностью. С другой стороны, часто описываемый ответ на определённые антимикробные препараты, такие как доксициклин, у собак с ХВР может быть обусловлен другими, неантимикробными действиями, влияющими на воспаление и протеолиз [26]. Сложность взаимодействия между бактериями и воспалительным ответом слизистой оболочки была исследована у людей с хроническим риносинуситом, и представляется, что бактерии слизистой оболочки могут как уклоняться от местного иммунного ответа, так и модулировать его [14; 38; 41]. У собак было показано, что назальный микробиом изменён при ХВР [33; 34], однако связь между бактериями, иммунным ответом и тяжестью заболевания требует дальнейших исследований.

Количество эозинофилов было низким в обеих группах, однако у собак с ринитом их было достоверно больше. Мы исключили собак с преимущественно эозинофильным воспалением, поскольку считается, что хронический эозинофильный ринит является отдельной нозологической единицей, связанной с гиперчувствительностью I типа [7; 17; 32]. Эозинофилы были описаны как присутствующие у некоторых собак с диагностированным лимфоплазмоцитарным ринитом и у человека при неаллергическом рините [16; 20; 37]. Наличие небольшого количества эозинофилов в нашей популяции собак с ринитом может быть частью воспалительного ответа или может указывать на возможный аллергический компонент заболевания. Интересно, что у собак с ХВР была описана повышенная транскрипция интерлейкина-5 без повышения регуляции других Th2-цитокинов, что может играть роль в антиген-индуцированной тканевой эозинофилии [23]. Частичный Th2-иммунный ответ, обнаруженный в слизистой оболочке носа собак с ХВР, сходен с таковым при неаллергическом хроническом риносинусите у человека, где эозинофилы и лимфоциты являются преобладающими воспалительными клетками [23; 27]. Количество эозинофилов коррелировало с увеличением количества нейтрофилов и интраэпителиальным воспалением в слизистой оболочке в нашем исследовании и может быть частью общего воспалительного ответа, а не специфически указывать на аллергическое заболевание.

Количество интраэпителиальных лейкоцитов слизистой оболочки было достоверно увеличено у собак с ХВР, что также сообщалось при хроническом риносинусите у человека [4]. В слизистой оболочке носа человека предполагалось, что интраэпителиальные лимфоциты и лимфоциты собственной пластинки составляют регионарную иммунную систему [22]. Увеличение количества интраэпителиальных лейкоцитов у больных собак может быть спровоцировано микробами или другими раздражающими факторами в носовой полости. Интраэпителиальные лимфоциты были дополнительно оценены с помощью иммуногистохимии. Т-лимфоциты были обнаружены как в эпителии, так и в собственной пластинке, а В-лимфоциты — только в собственной пластинке, как описано в слизистой оболочке носа человека [22]. Установлено, что в эпителии преобладают цитотоксические Т-клетки, являющиеся частью врождённой иммунной реакции [22]. Интраэпителиальные лейкоциты представляют собой единообразный, но вариабельный признак у больных собак, который минимально выражен в контроле, и отражают типичные изменения при воспалительной реакции. Однако воспалительные триггеры у собак с ХВР неизвестны, и их выявление является целью будущих исследований.

Внутрисосудистые нейтрофилы и васкулит были достоверно увеличены у собак с ХВР и были описаны ранее при этом заболевании [37]. Наличие фиброза и внутрисосудистых нейтрофилов является распространённой, но неспецифической находкой при воспалительных реакциях [1]. Васкулит, обнаруженный у собак с ХВР, вероятно, вторичен по отношению к воспалительному процессу в слизистой оболочке носа, поскольку клиническая картина не указывает на первичные иммуноопосредованные васкулитные синдромы, описанные у собак, а вторичный васкулит часто описывается при различных воспалительных состояниях, включая ХВР [31]. Лимфоидная гиперплазия одинаково выявлялась в обеих группах и, вероятно, является нормальной физиологической находкой.

В дополнение к воспалительным изменениям, мы обнаружили изменения эпителия слизистой оболочки, происходящие при ХВР. Эпителий был гиперплазирован у собак с ХВР. Эпителиальные клетки могут подвергаться гиперплазии или метаплазии в ответ на хроническое воспаление [19]. Эпителиальная гиперплазия была описана ранее у собак с ХВР и у человека при хроническом риносинусите [5; 27; 37]. В нашем исследовании мы в основном выявляли гиперплазию эпителия, но в некоторых биоптатах также подозревались ранние метапластические изменения, возможно, объясняющие потерю ресничек и недостаток бокаловидных клеток у этих собак, поскольку плоскоклеточная метаплазия респираторного эпителия может сопровождаться потерей реснитчатых и бокаловидных клеток [19]. Плоскоклеточная метаплазия описана при хроническом риносинусите у человека [4; 21]. Хронический воспалительный ринит может иметь продолжительность клинических признаков от месяцев до лет [37], как видно в представленных случаях. Интересно, что единственным фактором, положительно коррелировавшим с продолжительностью клинических признаков, было наличие отёка в собственной пластинке. Это было частично неожиданным, поскольку толщина эпителия или фиброз могли быть связаны с большей продолжительностью воспаления слизистой оболочки. Это опять же может быть частично объяснено популяцией собак с ХВР с относительно лёгким фенотипом заболевания в данном исследовании.

Эпителий носа обеспечивает механический барьер против физического повреждения и вдыхаемых частиц, но также играет важную дополнительную роль в функциях врождённого иммунитета [28]. Было показано при заболеваниях носа у человека, что эпителиальные клетки активно вовлечены в воспалительный процесс посредством презентации антигена, функций распознавания паттернов и секреции цитокинов, липидных медиаторов и пептидных продуктов [25; 28; 40]. С учётом этого, воспаление при ХВР может быть изначально инициировано эпителиальными клетками в ответ на стимул, а последующие изменения обусловлены продукцией провоспалительных цитокинов эпителиальными клетками и привлечением и активацией лейкоцитов. Эпителиальные клетки также могут вносить вклад в хронические воспалительные реакции, например, путём высвобождения матриксной металлопротеиназы-9 [1]. В свою очередь, лейкоциты высвобождают факторы роста и цитокины [19; 27], которые могут приводить к эпителиальным изменениям, документированным при ХВР. Сочетание этих функций может приводить к порочному кругу, который в дальнейшем способствует утрате функции эпителия носа, приводя к клиническим признакам.

Меньшее количество бокаловидных клеток наблюдалось у собак с ХВР. Является ли это действительным снижением, или повышенная продукция слизи привела к опорожнению бокаловидных клеток, делая их менее видимыми при гистологическом анализе, ещё предстоит определить. Наши находки противоречили данным при хроническом риносинусите у человека, где часто присутствует гиперплазия бокаловидных клеток [4; 21]. В нашем исследовании количество бокаловидных клеток отрицательно коррелировало с толщиной эпителия, что может указывать на развитие изменений типа эпителиальных клеток у поражённых собак. В некоторых исследованиях не было обнаружено разницы в количестве бокаловидных клеток между ринитом и нормальным контролем, но была показана повышенная функциональная активность бокаловидных клеток носа, объясняющая повышенную секрецию при рините [2; 3]. Помимо бокаловидных клеток, железы слизистой оболочки носа также вносят вклад в продукцию слизи [7]. Необходимы дальнейшие исследования для оценки присутствия и активности бокаловидных клеток у собак с ХВР. В случаях действительного снижения количества бокаловидных клеток следует дополнительно оценить роль желёз слизистой оболочки в повышенной продукции слизи у собак с ХВР.

У некоторых собак с ринитом наблюдалась потеря видимых ресничек. Образцы назальных биоптатов в обеих группах были взяты приблизительно из одной и той же области носовой полости, поэтому тип эпителия и наличие ресничек вряд ли обусловлены локализацией взятия образца. Реснички играют критическую роль в защите дыхательных путей, поскольку мукоцилиарный клиренс является важным средством элиминации микробов и других частиц [11]. Потеря ресничек может способствовать накоплению слизи, наблюдаемому клинически у этих собак, и предрасполагать к вторичным инфекциям. Потеря ресничек описана при хроническом риносинусите у человека вследствие плоскоклеточной метаплазии респираторного эпителия [4; 21]. Необходимы дальнейшие исследования, чтобы определить, на какой стадии заболевания происходит потеря ресничек и может ли раннее выявление и лечение воспаления предотвратить эпителиальную метаплазию и потерю ресничек.

Хотя деструкция носовых раковин является частой клинической находкой, она не была обнаружена при гистологической оценке. Поскольку почти все биоптаты были получены во время КТ-исследования, отсутствие хрящевых/костных изменений не объясняется разными временными точками в развитии заболевания. Однако эта оценка была ограничена поверхностными образцами с наличием лишь фрагментов костной/хрящевой ткани, и результаты могли бы быть иными, если бы были получены более инвазивные хирургические биоптаты, содержащие не только слизистую оболочку, но и значительные участки подлежащего хряща и кости. Кроме того, поскольку многие биоптаты были получены вслепую, забор образца мог не быть прицельным в область деструкции носовых раковин. Однако возможно, что первоначальный процесс, ведущий к деструкции носовых раковин, уже не присутствует на момент биопсии. Дальнейшие исследования, включая посмертные исследование собак с ХВР с оценкой всей носовой полости, могли бы показать, достигает ли воспаление хрящевой и костной ткани, что затем приводит к деструкции носовых раковин.

Данное исследование имело определённые ограничения. Как неизбежное ограничение, назальные биоптаты, полученные от клинических пациентов, представляли лишь часть всей слизистой оболочки носа. Кроме того, имелись несоответствия в размере и качестве биоптатов. Малый размер некоторых биоптатов и артефакты, вызванные растяжением и раздавливанием, могли повлиять на некоторые анализы. Это было наиболее очевидно при оценке отёка собственной пластинки. Для некоторых образцов было возможно оценить только 2 поля при большом увеличении вместо 3, что потребовало математической экстраполяции результатов подсчёта клеток в этих случаях. Однако, несмотря на вариабельность биоптатов, авторы сочли, что они смогли адекватно оценить все биоптаты. Кроме того, ретроспективная идентификация собак с ХВР является ограничением. Тем не менее, всесторонняя оценка была проведена для всех собак по одному протоколу и в одном учреждении, с доступностью всех клинических данных, выполнением как антеградной, так и ретроградной риноскопии и интерпретацией КТ одним радиологом, что позволило нам исключить любые фокальные поражения, которые могли бы быть пропущены при оценке только биоптатов. Следует отметить, что собаки с диагностированным ХВР имели либо лёгкое, либо умеренное клиническое заболевание с преимущественно отсутствующей или лёгкой деструкцией носовых раковин. Это может влиять на гистопатологические изменения, обнаруженные в данном исследовании, и более тяжёлые изменения могут быть выявлены в биоптатах у более тяжело поражённой популяции.

Подводя итоги: небольшая популяция лейкоцитов также наблюдалась в собственной пластинке слизистой оболочки носа контрольных собак без назальных симптомов, что, вероятно, представляет физиологическую популяцию иммунных клеток. Количество лейкоцитов увеличено при ХВР, и тип воспаления не является исключительно лимфоплазмоцитарным, поскольку у собак с ХВР также выявлялись нейтрофилы и эозинофилы. При ХВР происходят значительные эпителиальные изменения, включая увеличение количества интраэпителиальных лейкоцитов (слизистой оболочки) и эпителиальную гиперплазию, которые, вероятно, вносят вклад в клиническое заболевание. Снижение количества бокаловидных клеток и ресничек часто выявлялось у поражённых собак и может представлять собой форму респираторной эпителиальной метаплазии.


Благодарности. Авторы благодарят Департамент ветеринарных бионаук и Учебный ветеринарный госпиталь Университета Хельсинки за участие в сборе материала и (посмертных) исследованиях. Гистологические образцы были обработаны и окрашены в Финском центре патологии лабораторных животных (FCLAP) при поддержке HiLIFE и Факультета ветеринарной медицины Университета Хельсинки, а также Biocenter Finland.
Вклад авторов. SV, MR и NA разработали дизайн исследования. EK, KK и HN осуществляли сбор контрольного материала. SV и HN проводили анализ и сбор клинических случаев. NA, H-MJ и HN выполняли гистологическую оценку. AT выполнял оценку КТ-сканов. HN и SV проводили статистический анализ. Рукопись была написана HN, SV и NA при участии MR, H-MJ и других авторов.
Заявление о конфликте интересов. Автор(ы) заявили об отсутствии потенциальных конфликтов интересов в отношении исследования, авторства и/или публикации данной статьи.
Финансирование. Автор(ы) раскрыли получение следующей финансовой поддержки для исследования, авторства и/или публикации данной статьи: HN получила исследовательские гранты от Финского фонда ветеринарных исследований (Finnish Foundation of Veterinary Research) и Финского ветеринарного фонда (Finnish Veterinary Foundation). Источники финансирования не оказывали никакого влияния на дизайн исследования, сбор образцов, интерпретацию результатов или подготовку данной статьи.


Литература
  1. Ackermann MR. Inflammation and healing. In: Zachary JF, ed. Pathologic Basis of Veterinary Disease. 7th ed. Maryland Heights, MI: Mosby; 2022:103–136.
  2. Berger G, Marom Z, Ophir D. Goblet cell density of the inferior turbinates in patients with perennial allergic and nonallergic rhinitis. Am J Rhinol. 1997;11(3):233–236.
  3. Berger G, Moroz A, Marom Z, et al. Inferior turbinate goblet cell secretion in patients with perennial allergic and nonallergic rhinitis. Am J Rhinol. 1999;13(6):473–477.
  4. Bizaki AJ, Numminen J, Taulu R, et al. Treatment of rhinosinusitis and histopathology of nasal mucosa: a controlled, randomized, clinical study. Laryngoscope. 2016;126:2652–2658.
  5. Burgener DC, Slocombe RF, Zerbe CA. Lymphoplasmacytic rhinitis in five dogs. J Am Anim Hosp Assoc. 1987;23:565–568.
  6. Cai HY, Caswell JL, Prescott JF. Nonculture molecular techniques for diagnosis of bacterial disease in animals: a diagnostic laboratory perspective. Vet Pathol. 2014;51:341–350.
  7. Caswell JL, Williams KJ. Respiratory system. In Maxie MG, ed. Jubb, Kennedy & Palmer’s Pathology of Domestic Animals: Volume 2. 6th ed. Philadelphia, PA: Saunders Ltd; 2015.
  8. Flouraki E, Kazakos G, Savvas I, et al. Rhinitis following intraoperative gastrooesophageal reflux in a dog. Vet Rec Case Rep. 2019;7:e000792.
  9. Furtado AR, Constantino-Casas F. Histopathology inflammation scoring and classification in 34 dogs with inflammatory nasal disease. Vet Rec. 2013;173:71.
  10. Gianella P, Roncone S, Ala U, et al. Upper digestive tract abnormalities in dogs with chronic idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis. J Vet Intern Med. 2020;34:1845–1852.
  11. Gudis DA, Cohen NA. Cilia dysfunction. Otolaryngol Clin North Am. 2010;43:461–472.
  12. Hawkins EC, Johnson LR, Guptill L, et al. Failure to identify an association between serologic or molecular evidence of Bartonella infection and idiopathic rhinitis in dogs. J Am Vet Med Assoc. 2008;233:597–599.
  13. Kaczmar E, Rychlik A, Szweda M. The evaluation of three treatment protocols using oral prednisone and oral meloxicam for therapy of canine idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis: a pilot study. Ir Vet J. 2018;71:19.
  14. Kim RJ, Yin T, Chen CJ, et al. The interaction between bacteria and mucosal immunity in chronic rhinosinusitis: a prospective cross-sectional analysis. Am J Rhinol Allergy. 2013;27:e183–119.
  15. Lefebvre J, Kuehn NF, Wortinger A. Computed tomography as an aid in the diagnosis of chronic nasal disease in dogs. J Small Anim Pract. 2005;46:280–285.
  16. Lobetti RG. Idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis in 33 dogs. J S Afr Vet Assoc. 2014;85:1151.
  17. Meler E, Dunn M, Lecuyer M. A retrospective study of canine persistent nasal disease: 80 cases (1998-2003). Can Vet J. 2008;49:71–76.
  18. Mercier E, Peters IR, Day MJ, et al. Toll- and NOD-like receptor mRNA expression in canine sino-nasal aspergillosis and idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis. Vet Immunol Immunopathol. 2012;145:618–624.
  19. Miller MA, Lyle LT, Zachary JF. Mechanisms and morphology of cellular injury, adaptation, and death. In: Zachary JF, ed. Pathologic Basis of Veterinary Disease. 7th ed. Maryland Heights, MI: Mosby; 2022: 2–43.e19.
  20. Mullarkey MF, Hill JS, Webb DR. Allergic and nonallergic rhinitis: their characterization with attention to the meaning of nasal eosinophilia. J Allergy Clin Immunol. 1980;65:122–126.
  21. Pawankar R, Nonaka M. Inflammatory mechanisms and remodeling in chronic rhinosinusitis and nasal polyps. Curr Allergy Asthma Rep. 2007;7:202–208.
  22. Pawankar R, Okuda M. A comparative study of the characteristics of intraepithelial and lamina propria lymphocytes of the human nasal mucosa. Allergy. 1993;48:99–105.
  23. Peeters D, Peters IR, Helps CR, et al. Distinct tissue cytokine and chemokine mRNA expression in canine sino-nasal aspergillosis and idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis. Vet Immunol Immunopathol. 2007;117:95–105.
  24. Plickert HD, Tichy A, Hirt RA. Characteristics of canine nasal discharge related to intranasal diseases: a retrospective study of 105 cases. J Small Anim Pract. 2014;55:145–152.
  25. Polito AJ, Proud D. Epithelial cells as regulators of airway inflammation. J Allergy Clin Immunol. 1998;102(5):714–718.
  26. Sapadin AN, Fleischmajer R. Tetracyclines: nonantibiotic properties and their clinical implications. J Am Acad Dermatol. 2006;54:258–265.
  27. Schleimer RP. Immunopathogenesis of chronic rhinosinusitis and nasal polyposis. Annu Rev Pathol. 2017;12:331–357.
  28. Schleimer RP, Kato A, Peters A, et al. Epithelium, inflammation, and immunity in the upper airways of humans: studies in chronic rhinosinusitis. Proc Am Thorac Soc. 2009;6:288–294.
  29. Stepaniuk KS, Gingerich G. Suspect odontogenic infection etiology for canine lymphoplasmacytic rhinitis. J Vet Dent. 2015;32:22–29.
  30. Stoop AE, Hameleers DM, Run PE, et al. Lymphocytes and nonlymphoid cells in the nasal mucosa of patients with nasal polyps and of healthy subjects. J Allergy Clin Immunol. 1989;84:734–741.
  31. Swann JW, Priestnall SL, Dawson C, et al. Histologic and clinical features of primary and secondary vasculitis: a retrospective study of 42 dogs (2004–2011). J Vet Diagn Invest. 2015;27:489–496.
  32. Tasker S, Knottenbelt CM, Munro EA, et al. Etiology and diagnosis of persistent nasal disease in the dog: a retrospective study of 42 cases. J Small Anim Pract. 1999;40:473–478.
  33. Tress B, Dorn ES, Suchodolski JS, et al. Bacterial microbiome of the nose of healthy dogs and dogs with nasal disease. PLoS ONE. 2017;12:e0176736.
  34. Vangrinsven E, Fastrès A, Taminiau B, et al. Assessment of the nasal microbiota in dogs with fungal rhinitis before and after cure and in dogs with chronic idiopathic rhinitis. BMC Microbiol. 2023;23:104.
  35. Vanherberghen M, Bureau F, Peters IR, et al. Analysis of gene expression in canine sino-nasal aspergillosis and idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis: a transcriptomic analysis. Vet Microbiol. 2012;157:143–151.
  36. Windsor RC, Johnson LR. Canine chronic inflammatory rhinitis. Clin Tech Small Anim Pract. 2006;21:76–81.
  37. Windsor RC, Johnson LR, Herrgesell EJ, et al. Idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis in dogs: 37 cases (1997-2002). J Am Vet Med Assoc. 2004;224:1952–1957.
  38. Windsor RC, Johnson LR, Sykes JE, et al. Molecular detection of microbes in nasal tissue of dogs with idiopathic lymphoplasmacytic rhinitis. J Vet Intern Med. 2006;20:250–256.
  39. Wood AJ, Fraser JD, Swift S, et al. Intramucosal bacterial microcolonies exist in chronic rhinosinusitis without inducing a local immune response. Am J Rhinol Allergy. 2012;26(4):265–270.
  40. Yan Y, Gordon WM, Wang D-Y. Nasal epithelial repair and remodeling in physical injury, infection, and inflammatory diseases. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 2013;21:263–270.
  41. You H, Zhuge P, Li D, et al. Factors affecting bacterial biofilm expression in chronic rhinosinusitis and the influences on prognosis. Am J Otolaryngol. 2011;32(6):583–590.

Источник: Veterinary Pathology, 2026, Vol. 63(1), 86–96. DOI: 10.1177/03009858251349138. © The Author(s) 2025. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution License (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/), which permits unrestricted use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

СВМ № 4/2026

[wpforms id="189076" title="false"]

Мы знаем, что для вас важно получать актуальную информацию в удобном для вас виде и формате. Не забудьте подписаться на удобные для вас каналы Zooinform.ru

Вход через Яндекс ID — webseed.ru