V. Petrov1, G. Zhelev1, P. Marutsov1, K. Koev1, S. Georgieva2, I. Toneva2 & V. Urumova1
1Department of Veterinary Microbiology, Infectious and Parasitic Diseases
2Student; Faculty of Veterinary Medicine, Trakia University, Stara Zagora, Bulgaria
Резюме
Целью настоящего исследования было сравнение распространённости микробных агентов, принимающих участие в этиологии наружного отита у собак, и их чувствительности к антимикробным препаратам в двух периодах: 2007–2011 и 2013–2017 годы. В период 2013–2017 годов доминирующими видами бактерий были коагулазоположительные стафилококки (186 изолятов), на втором месте — Pseudomonas aeruginosa (82 штамма). Уровень изолированных грибов (в основном, Malassezia pachydermatis) был сравнительно высок (152 изолята). По сравнению с более ранним периодом (2007–2011) была отмечена тенденция к более частому возникновению коинфекций (61,7%), и более чем в 80% случаях коинфекции выделялись дрожжевые организмы. Картина антибиотикорезистентности показывала явный тренд к усилению резистентности коагулазоположительных стафилококков и β-гемолитических стрептококков к амоксициллину/клавулановой кислоте (42 и 50% соответственно) и гентамицину (29 и 40%). Было отмечено увеличение резистентности P. aeruginosa к гентамицину (16%) и амикацину (18%). Доля псевдомонад, устойчивых к энрофлоксацину, была более низкой (27%).
Ключевые слова: антибиотикорезистентность, собака, микробиологический профиль, наружный отит.
Вступление
Наружный отит (otitis externa) — острое или хроническое воспаление ушной раковины, наружного слухового прохода и наружного слоя барабанной перепонки [35]. Заболевание может быть как первичным (инородные тела, эктопаразиты и т. п.), так и вторичным вследствие осложнений стеноза слухового прохода, при висячих ушах, попадании чрезмерного количества шерсти или воды в слуховой проход, обструкции, атопическом дерматите, аллергических кожных реакциях на корм, метаболических расстройствах, абнормальной кератинизации, аутоиммунных процессах, повреждениях при манипуляциях и т. д. Наружный отит широко распространён среди щенков, поражая 5–20% животных [2; 12; 20; 37].
Нормальная микрофлора ушного канала включает, главным образом, Staphylococcus spp. (коагулазопозитивных и коагулазоотрицательных), β-гемолитических Streptococcus spp., Bacillus spp. [37; 20]. Также сообщалось о присутствии в наружном ухе Malassezia pachydermatis (M. pachydermatis), Microsporum canis и Otodectes cynoti без возникновения воспаления [6; 14; 1; 21].
Наиболее частыми патогенами, связанными с возникновением наружного отита, являются представители рода Staphylococcus, Streptococcus spp., Corynebacterium spp.; Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa), Proteus mirabilis (P. mirabilis), Escherichia coli (E. coli) и Klebsiella pneumoniae [17]. Основными видами стафилококков, участвующих в этиологии заболевания, являются коагулазоположительные S. pseudintermedius (ранее S. intermedius) [10], S. aureus, S. schleiferi subs. coagulans и коагулазоотрицательные S. epidermidis, S. schleiferi subs. schleiferi, S. simulans и S. saprophyticus [19; 15; 27; 23]. M. pachydermatis также обнаруживается во многих случаях. Дрожжевые организмы широко распространены у животных, длительно лечившихся антибиотиками. Следует отметить, что бактерии и грибы не выступают в качестве первичных патогенов при наружном отите, но являются случайными видами, которые размножаются при благоприятных условиях вследствие возникновения иных первичных причин [32; 25].
Лечение наружного отита у собак по-прежнему остаётся серьёзной проблемой. В клиниках для мелких животных обычно применяется местная антимикробная терапия с целю уничтожения бактериальной или грибковой инфекции [2]. Однако для успеха терапии важно определение первичной причины воспаления уха [18]. В большинстве случаев антибактериальная терапия назначается без идентификации микробных патогенов и их чувствительности к антимикробным препаратам. Такой подход часто неэффективен, когда микроорганизмы устойчивы к применяемым препаратам; это ведёт к рецидивам отита, поскольку первичная причина не устраняется или же вследствие селекции устойчивых штаммов.
Цель настоящего исследования — изучить изменения в распространённости инфекционных агентов при наружном отите у собак и их чувствительности к антимикробным препаратам в 2013–2017 годах по сравнению с периодом 2007–2011 годов [30].
Материалы и методы
Исследование проводилось в период между январём 2013 и декабрём 2017 года в микробиологической лаборатории кафедры ветеринарной микробиологии, инфекционных и паразитарных болезней факультета ветеринарной медицины Фракийского университета, Стара-Загора, Болгария.
Животные и пробы
Всего были взяты пробы у 185 собак с наружным отитом. 124 собаки имели двухсторонний отит, всего у них были взяты 248 проб (из каждого уха). Число проб от собак с односторонним отитом составило 61. Все 309 мазка с секретом, выделяющимся при наружном отите, были присланы из частных ветеринарных клиник для бактериологического исследования и тестов на антибактериальную чувствительность. Они помещались в систему Amies transport medium при низких температурах и транспортировались в лабораторию логистическими компаниями.
Прозрачность как конкурентное преимущество сервисов для животных
История болезни в большинстве случаев включала хроническое течение, эмпирическое лечение без удовлетворительного результата и частые рецидивы.
Микробиологическое исследование
Образцы культивировались одновременно на кровяном агаре (Merck, Германия) с содержанием 5% крови овец и на агаре МакКонки (Merck, Германия). Культуры инкубировались аэробно 24–48 часов при температуре 37°C. Для микробиологического исследования те же образцы высеивались на 2–7 дней на 4% декстрозный агар Sabouraud (Merck, Германия) с добавлением 0,4 г/л хлорамфеникола (> 99% HPLC, Fluka, Китай) и 0,5 г/л актидиона (циклогексимид, > 93% HPLC, Fluka, Китай) при 37°C аэробно. Изоляты стафилококков идентифицировались согласно руководствам Bergey’s Manual of Determi-native Bacteriology [16] и Manual of Clinical Microbiology [26] на основе внешнего вида колоний, окрашивания по Граму, выделению пигментов, наличию гемолизиса и биохимическим свойствам (продукция каталазы, оксидазы и коагулазы).
Чувствительность бактериальных изолятов к антимикробным препаратам тестировалась методом диффузии дисков, интерпретация результатов — согласно системе оценки Бауэра-Кирби [5], в соответствии с указаниями Института клинических и лабораторных стандартов (2013). Были использованы следующие диски с антимикробными веществами: амоксициллин/клавулановая кислота (20/10 мкг), цефкином (30 мкг), гентамицин (10 мкг), тобрамицин (10 мкг), амикацин (30 p.g), энрофлоксацин (5 мкг), марбофлоксацин (5 мкг), хлорамфеникол (30 мкг), линкомицин/спектиномицин (9/100 мкг) и полимиксин B (10 мкг).
Статистический анализ
Проведено определение 95-процентного доверительного интервала с помощью статистического программного обеспечения GraphPad InStat v. 3.00 (GraphPad Software Inc., La Jolla, CA).
Результаты
Отрицательные результаты микробиологического исследования были получены для 35 из 309 проб. Из 274 образцов с ростом микроорганизмов были изолированы 505 штаммов (таблица 1).
Таблица 1. Число и соотношение изолятов патогенов при наружном отите собак в период 2013–2017 годов
| Патогенные микроорганизмы | Число изолятов | Доля (%) | 95% довери- тельный интервал |
| Стафилококки (коагулазопозитивные) | 186 | 36,83 | 33,1÷40,8 |
| M. pachydermatis | 152 | 30,01 | 26,1÷33,4 |
| P. aeruginosa | 82 | 16,24 | 13,4÷19,2 |
| P. mirabilis | 18 | 3,56 | 2,5÷5,6 |
| E. coli | 16 | 3,17 | 2,4÷5,8 |
| Стафилококки (коагулазонегативные) | 15 | 2,97 | 2,1÷5,1 |
| Стрептококки (β-гемолитические) | 15 | 2,97 | 2,1÷5,1 |
| Candida spp. | 12 | 2,38 | 1,3÷2,7 |
| Bacillus spp. | 5 | 0,99 | 0,3÷1,9 |
| Corynebacterium spp. | 4 | 0,79 | 0,2÷1,6 |
| Всего | 505 | 100 | – |
Моноинфекция была диагностирована в 105 (38,3%) из 274 позитивных образцов. Чаще всего в изолятах были выявлены коагулазоположительные Staphylococcus и P. aeruginosa (39 и 31 случай, соответственно), следующая по частоте — M. pachydermatis (23 случая). Моноинфекции, вызванные коагулазоотрицательными стафилококками, P. mirabilis, Corynebacterium spp. и β-гемолитическими стрептококками, встречались редко (в 5, 3, 3, 1 случае соответственно). Чаще всего встречалась коинфекция (169 случаев, или 61,7%), с преобладанием комбинации коагулазоположительных стафилококков и M. pachydermatis (67 случаев); коагулазоположительных стафилококков и P. aeruginosa (11 случаев); M. pachydermatis и P. aeruginosa (10 случаев). В 44 образцах были выделены одновременно три вида микроорганизмов, также с преобладанием ассоциации коагулазоположительных стафилококков, M. pachydermatis и P. aeruginosa (15 случаев) и коагулазоположительных стафилококков, M. pachydermatis и β-гемолитических Streptococcus spp. (10 случаев). Из остальных 10 образцов выделены одновременно 4 вида микроорганизмов.
У 104 собак выделенные микроорганизмы были одинаковыми для левого и правого уха; таким образом, анализировались 334 изолята, включая 92 штамма грибов. Протестирована чувствительность к антимикробным препаратам 242 бактериальных изолятов (таблицы 2 и 3).

Антибиотикорезистентность обнаруживалась во многих случаях. Коагулазопозитивные стафилококки показали высокую резистентность к амоксициллину с β-лактамазным ингибитором. Эти бактерии также часто были устойчивыми к линкомицину/спектиномицину, полимиксину B, хлорамфениколу и фторхинолонам. Стафилококки, выделенные у собак с наружным отитом, были наиболее чувствительны к аминогликозидам и цефкиному.

Как и ожидалось, наибольшую устойчивость к антимикробным препаратам демонстрировали псевдомонады, в особенности против амоксициллина/клавулановой кислоты, линкомицина/спектиномицина и хлорамфеникола. Изоляты P. aeruginosa имели относительно хорошо сохранённую чувствительность к гентамицину и амикацину, однако были значительно резистентны к энрофлоксацину и марбофлоксацину.
Обсуждение
Сравнение данных за 2013–2017 годы с аналогичными за предыдущий период 2007–2011 годов [30] показало, что стафилококки, M. pachydermatis и P. aeruginosa являлись преобладающими видами микроорганизмов, изолированных от собак с наружным отитом. В 2013–2017 годах коагулазоположительные стафилококки встречались больше чем в 70% клинических случаев. Заметный рост доли образцов с изолятами грибов (M. pachydermatis и Candida spp.) — более 65% и P. aeruginosa — 33% был отмечен в сравнении с предыдущим периодом, процентное отношение случаев 40 и 17% соответственно. Это увеличение, вероятно, является следствием большего числа клинических образцов от пациентов с хроническим отитом, безуспешным лечением или рецидивами в истории болезни. Подобное высокое преобладание M. pachydermatis у собак было отмечено Crespo et al. (2002) в Испании, Nardoni et al. (2014) в Италии и Bardshiri et al. (2014) в Иране. Schick et al. (2007) изолировали P. aeruginosa в 53% случаев хронического наружного отита у собак, как и в нашем исследовании.
Наличие моноинфекции M. pachydermatis в 23 случаях служит доказательством неудачи антибиотикотерапии, назначаемой без идентификации присутствующих микробных агентов. Это комменсальные виды, обитающие на коже животных и человека, размножающиеся при наличии благоприятных факторов, таких как стеноз слухового прохода, массовое наличие шерсти, повышенная влажность и длительное лечение антибиотиками [28]. Между тем, по сравнению с нашим предыдущим исследованием [30], снизилось число проб, из которых были выделены только грибы. Вероятно, это может быть связно с бо́льшим числом пациентов с хроническим отитом с полимикробной ассоциацией. В настоящем исследовании коинфекции с участием грибов присутствовали почти в 80% случаев (140 из 169 образцов с выделением более одного изолята) по сравнению с 50% (66 образцов из 132 коинфекций) в предыдущем исследовании.
Анализ тестов на чувствительность бактериальных изолятов показывал высокую устойчивость грамположительных бактерий к классическим антимикробным препаратам: β-лактамам и линкоспектину. Особое внимание необходимо уделить значимому увеличению устойчивости грамположительных бактерий к комбинации амоксициллина/клавулановой кислоты. Наши данные по чувствительности к этим препаратам сравнимы с результатами, полученными De Martino et al. (2016) и Saputra et al. (2017), но существенно выше, чем уровни, выявленные Robaj et al. (2015); Metiner et al. (2015); Dziva et al. (2015) и Terziev & Urumova (2018). Установленное повышение устойчивости изолятов стафилококков к аминогликозидам, хотя и не столь выраженное, в несколько раз превышало показатели других исследований. Например, Dziva et al. (2015) сообщали о 17% устойчивости к гентамицину, De Martino et al. (2016) — 11%, а Metiner et al. (2015) — только 2,5%. Только 1,1% штаммов стафилококков, изолированных от собак, были нечувствительными к амикацину в исследовании Saputra et al. (2016). Сходные с нашими данные об уровне резистентности были опубликованы Robaj et al. (2015): более 30%.
Сравнение устойчивости бактериальных изолятов при наружном отите собак в настоящем и предыдущем [30] исследованиях показало, что резистентность грамположительных бактерий (коагулазоположительные стафилококки и β-гемолитические стрептококки) к амоксициллину/клавулановой кислоте выросла в 8–10 раз: с 5 до 42 и 50%. Уровень устойчивости к остальным исследуемым антибиотикам изменился в меньшей степени, тогда как чувствительность коагулазоположительных стафилококков к полимиксину B даже увеличилась с 34 до 52%. Схожая тенденция — снижение устойчивых изолятов с 59% до 50% — наблюдалась в отношении комбинации линкомицин/спектиномицин (таблица 4).
Таблица 4. Антибиотикорезистентность (%) изолятов грамположительных бактериальных агентов при наружном отите собак в периоды 2007–2011 и 2013–2017 годов
| Стафилококки (коагулазопозитивные) | Стрептококки (β‑гемолитические) | |||
| 2007– 2011* | 2013– 2017 | 2007–2011* | 2013–2017 | |
| Амоксициллин/ клавулановая кислота | 5% | 42% | 5% | 50% |
| Гентамицин | 20% | 29% | 9% | 40% |
| Тобрамицин | 26% | 28% | 23% | 33% |
| Амикацин | 15% | 20% | 21% | 33% |
| Энрофлоксацин | 32% | 39% | 100% | 80% |
| Хлорамфеникол | 40% | 39% | 0% | 40% |
| Линкомицин/спектиномицин | 59% | 50% | 40% | 30% |
| Полимиксин B | 66% | 48% | 100% | Н.О. |
Н.О. – не определялось.
Установленная повышенная устойчивость стрептококков почти ко всем оцениваемым антибиотикам, в особенности амоксициллину/клавулановой кислоте, гентамицину, хлорамфениколу, соответствует результатам, полученным De Martino et al. (2016). Нужно отметить, что стрептококки являются редкими изолятами у собак с отитом. Их появление в большей степени при коинфекциях, нежели при моноинфекциях, наводит на мысль неуспешного применения антибиотиков, проводимого без чёткого определения патогенов и их антимикробного профиля.
Что касается грамотрицательных бактерий, более детальный анализ можно было сделать в отношении изолятов P. aeruginosa, поскольку число штаммов E. coli и P. Mirabilis было низким. Как и ожидалось, процент псевдомонад, устойчивых к хлорамфениколу, амоксициллину/клавулановой кислоте и линкомицину/спектиномицину, был очень высоким. Выявленный уровень устойчивости среди изолятов Pseudomonas в настоящем исследовании был выше, чем в работах других исследователей [31; 9], но сходен с выявленным Sutkeviciute (2015) в Латвии.
Явная тенденция к увеличению резистентности штаммов Pseudomonas к обычным антимикробным препаратам, используемым в клинической практике — аминогликозидам, в первую очередь — гентамицину (таблица 5), является одной из существенных проблем для практикующих ветврачей. В то же время налицо значимое снижение доли штаммов, устойчивых к другой используемой группе антибиотиков — фторхинолонам, в особенности энрофлоксацину. Наблюдавшаяся примерно у одной трети изолятов P. aeruginosa устойчивость к энрофлоксацину и марбофлоксацину может быть следствием неверного подхода к терапии отита собак, вызванного Pseudomonas, что привело к возникновению резистентных штаммов. Данная ситуация, вероятно, схожа с таковой в других странах, как видно из сообщений о низкой чувствительности псевдомонад к энрофлоксацину: 52% [22], 56,5% [9], только 35% [36].
Таблица 5. Антибиотикорезистентность (%) изолятов грамотрицательных бактериальных агентов при наружном отите собак в периоды 2007–2011 и 2013–2017 годов
| P. aeruginosa | E.coli | P. mirabilis | ||||
| 2007–2011* | 2013–2017 | 2007–2011* | 2013–2017 | 2007–2011* | 2013–2017 | |
| Амоксициллин/ клавулановая кислота | 100% | 90% | 32% | 25% | 30% | 15% |
| Гентамицин | 2% | 15% | 18% | 38% | 28% | 21% |
| Тобрамицин | 20% | 26% | 5% | 0% | 0% | Н.О. |
| Амикацин | 0% | 18% | 0% | 0% | 0% | 33% |
| Энрофлоксацин | 38% | 21% | 14% | 38% | 22% | 1% |
| Хлорамфеникол | 100% | 92% | 0% | 43% | 74% | 88% |
| Линкомицин/ спектиномицин | 40% | 93% | 0% | 29% | 55% | 85% |
| Полимиксин B | 0% | 50% | 0% | 0% | 74% | 51% |
* from Petrov et al. (2013)
Н.О. – не определялось.
Подобная тенденция была выявлена в отношении резистентности штаммов P. mirabilis. Эти микроорганизмы были отмечены как имеющие наибольшую устойчивость к хлорамфениколу, линкомицину/стрептомицину и амоксициллину/клавулановой кислоте. Изоляты Proteus выделялись при хронических коинфекциях, в основном ассоциированных с P. aeruginosa и M. pachydermatis. Таким образом, устойчивость к этим антимикробным препаратам не имела существенного влияния на эффективность терапии, поскольку псевдомонады также были к ним устойчивы. Резистентность почти 1/3 штаммов P. mirabilis к гентамицину и амикацину, частичная ассоциация с псевдомонадами, для которых эти антибиотики являются стратегическими, подтверждают предположение о неверном подходе к лечению хронического отита у собак.
Среди изолятов E. coli устойчивость к гентамицину и энрофлоксацину выросла почти в два раза. Этот факт говорит о том, что назначение этих антибактериальных препаратов без необходимости до сих пор является распространённой практикой, тогда как колибактерии очень легко вырабатывают резистентность. Это не является только внутринациональной проблемой. Исследование, проведённое в Австралии, показало, что 40% ветврачей используют фторхинолоны при лечении наружного отита у собак эмпирически, и когда при цитологии обнаруживаются грамотрицательные палочки, их доля достигает 61% [13]. Это приводит к быстрой выработке антибиотикорезистентности бактериальных штаммов, особенно после продолжительного лечения [29].
Сходные результаты были получены в отношении уровня резистентности к хлорамфениколу и линкомицину/спектромицину — в нашем предыдущем исследовании все изоляты E. coli были чувствительны к ним, тогда как в настоящем исследовании 30–40% изолятов уже приобрели устойчивость.
Всё ещё сохранившаяся 100-процентная чувствительность изолятов E. coli к амикацину, тобрамицину и полимиксину B требует внимательного использования этих стратегических антимикробных препаратов в будущем.
Заключение
Сравнительный анализ соотношения изолятов при отите собак показывает увеличение встречаемости комменсальных видов M. pachydermatis и P. aeruginosa, наряду с повышенной устойчивостью бактерий к наиболее используемым антибактериальным препаратам. Таким образом, необходимо использование точной этиологической диагностики и тестов на чувствительность к медикаментозной терапии. Такой подход позволит проводить научно обоснованную целенаправленную антибактериальную терапию.
Литература
- Aalbsk, B., D. A. Bemis, M. Schjffirff, S. A. Kama, L. A. Frank & L. Guardabassi, 2010. Coryneform bacteria associated with canine otitis externa. Veterinary Microbiology, 145, 292–298.
- Angus, J. C., 2004. Otic cytology in health and disease. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 34, 411–424.
- August, J. R., 1988. Otitis externa: A disease of multifactorial etiology. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 18, 731–742.
- Bardshiri, B., M. Tavana, S. Z. Peighambarzadeh, & M. Abdolrahimi, 2014. Occurrence of Malassezia pachydermatis in the external ear canals of dogs with and without otitis externa. Walia Journal, 30, 24–26.
- Bauer, A. W., W. M. Kirby, J. C. Sherris & M. Turk, 1966. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disc method. American Journal of Clinical Pathology, 45, 493–496.
- Bornand, V., 1992. Bacteriology and mycology of otitis externa in dogs. Schweizer Archiv fur Tierheilkunde, 134, 341–348.
- Clinical and Laboratory Standards Institute, 2013. Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility tests for bacteria isolated from animals; approved standard. 4th edn, CLSI, Wayne.
- Crespo, M. J., M. L. Abarca & F. J. Cabanes, 2002. Occurrence of Malassezia spp. in the external ear canals of dogs and cats with and without otitis externa. Medical Mycology, 40, 115–121.
- De Martino, L., F. P. Nocera, K. Mallardo, S. Nizza, E. Masturzo, F. Fiorito, G. Lovane & P. Catalanotti, 2016. An update on microbiological causes of canine otitis externa in Campania Region, Italy. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 6, 384–389.
- Devriese, L. A., K. Hermans, M. Baele, & F. Haesebrouck, 2009. Staphylococcus pseudintermedius versus Staphylococcus intermedius. Veterinary Microbiology, 133, 206–207.
- Dziva, F., C. Wint, T. Auguste, C. Heeraman, C. Dacon, P. Yu & L. M. Koma, 2015. First identification of methicillin-resistant Staphylococcus pseudintermedius strains among coagulase-positive staphylococci isolated from dogs with otitis externa in Trinidad, West Indies. Infection Ecology & Epidemiology, 5, 29170.
- Greene, C. E., 2006. Otitis externa. In: Infectious Diseases of the Dogs and Cats, 3rd edn, ed C. E. Greene, Saunders Elsevier: St. Louis, MO, USA, pp. 815–823.
- Hardefeldt, L. Y., S. Holloway, D. J. Trott, M. Shipstone, V. R. Barrs, R. Malik, M. Burrows, S. Armstrong, G. F. Browning & M. Stevenson, 2017. Antimicrobial prescribing in dogs and cats in Australia: Results of the Australasian Infectious Disease Advisory Panel Survey. Journal of Veterinary Internal Medicine, 31, 1100–1107.
- Hariharan, H., M. Coles, D. Poole, L. Lund & R. Page, 2006. Update on antimicrobial susceptibilities of bacterial isolates from canine and feline otitis externa. The Canadian Veterinary Journal, 47, 253–255.
- Hoekstra, K. A. & R. J. L. Paulton, 2002. Clinical prevalence and antimicrobial susceptibility of Staphylococcus aureus and Staph. intermedius in dogs. Journal of Applied Microbiology, 93, 406–413.
- Holt, J. G., N. R. Krieg, P. H. A. Sneathm, J. T. Staley & S. T. Williams, 1994. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology, 9th edn, Williams and Williams, Baltimore, MD.
- Gotthelf, L. N. 2004. Small Animal Ear Diseases: An Illustrated Guide. 2nd edn, Elsevier Saunders, Philadelphia USA.
- Jacobson, L. S., 2002. Diagnosis and medical treatment of otitis externa in the dog and cat. Journal of the South African Veterinary Association, 73, 162–170.
- Lilenbaum, W., M. Veras, E. Blum & G. N. Souza, 2000. Antimicrobial susceptibility of staphylococci isolated from otitis externa in dogs. Letters in Applied Microbiology, 31, 42–45.
- Lyskova, P., M. Vydrzalova & J. Mazurova, 2007. Identification and antimicrobial sus-ceptibility of bacteria and yeasts isolated from healthy dogs and dogs with otitis externa. Transboundary and Emerging Diseases, 54, 559–563.
- Malayeri, H. Z., S. Jamshidi & T. Z. Salehi, 2010. Identification and antimicrobial susceptibility patterns of bacteria causing otitis externa in dogs. Veterinary Research Communications, 34, 435–444.
- Martin, B. J. L., G. P. Lupiola, L. Z. Gonzalez & J. M. Tejedor, 2000. Antibacterial susceptibility patterns of Pseudomonas strains isolated from chronic canine otitis externa. Zoonoses and Public Health, 47, 191–196.
- May, E. R., K. A. Hnilica, L. A. Frank, R. D. Jones & D. A. Bemis, 2005. Isolation of Staphylococcus schleiferi from healthy dogs and dogs with otitis, pyoderma, or both. Journal of the American Veterinary Medical Association, 227, 928–931.
- Metiner, K., A. F. Bagcigil & A. Ilgaz, 2015. Determination of the diversity and antibiotic resistance profiles of Staphylococcus species from dogs with otitis externa and examination of mecA gene occurrence. Veterinarni Medicina, 60, 261–267.
- Miller, W. H., C. E. Griffin, K. L. Campbell & G. H. Muller, 2013. Diseases of eyelids, claws, anal sacs, and ears. In: Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology, 7th edn, Elsevier Health Sciences, pp. 724–774.
- Murray, P. R., E. J. Baron, J. H. Jorgensen, M. A. Pfaller & R. H. Yolken, 2003. Manual of Clinical Microbiology, 8th edn, ASM Press, Washington, DC.
- Nagase, N., A. Sasaki, K. Yamashita, A. Shimizu, Y. Wakita, S. Kitai & J. Kawano, 2002. Isolation and species distribution of staphylococci from animal and human skin. Journal of Veterinary Medical Science, 64, 245–250.
- Nardoni, S., V. V. Ebani, F. Fratini, R. Mannella, G. Pinferi, F. Mancianti, R. Finotello & S. Permed, 2014. Malassezia, mites and bacteria in the external ear canal of dogs and cats with otitis externa. Slovenian Veterinary Research, 51, 113–118.
- Penna, B., R. Varges, L. Medeiros, G. M. Martins, R. R. Martins & W. Lilenbaum, 2010. Species distribution and antimicrobial susceptibility of staphylococci isolated from canine otitis externa. Veterinary Dermatology, 21, 292–296.
- Petrov, V., G. Mihaylov, I. Tsachev, G. Zhelev, P. Marutsov & K. Koev, 2013. Otitis externa in dogs: microbiology and antimicrobial susceptibility. Revue de Medecine Veterinaire, 164, 18–22.
- Robaj, A., D. Sylejmani & A. Hamidi, 2015. Investigation and antimicrobial susceptibility of microbial agents of external otitis in dogs. Journal of Animal and Veterinary Advances, 14, 277–280.
- Rosser Jr, E. J., 2004. Causes of otitis externa. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 34, 459–468.
- Saputra, S., D. Jordan, K. A. Worthing, J. M. Norris, H. S. Wong, R. Abraham, D. J. Trott & S. Abraham, 2017. Antimicrobial resistance in coagulase-positive staphylococci isolated from companion animals in Australia: A one year study. PloS One, 12, 1–17.
- Schick, A. E., J. C. Angus & K. S. Coyner, 2007. Variability of laboratory identification and antibiotic susceptibility reporting of Pseudomonas spp. isolates from dogs with chronic otitis externa. Veterinary Dermatology, 18, 120–126.
- Smith, F. W., 2015. Otitis externa and media. In: Blackwell’s Five-Minute Veterinary Consult: Canine and Feline, John Wiley & Sons.
- Sutkevičiūte, V., 2015. Pseudomonas aeruginosa išskyrimas iš šunų ausų ir atsparumo antimikrobinems medžiagoms nustatymas. Doctoral dissertation, Lithuanian University of Health Sciences.
- Terziev, G. & V. Urumova, 2018. Retrospective study on the etiology and clinical signs of canine otitis. Comparative Clinical Pathology, 27, 7–12.
Источник: Bulgarian Journal of Veterinary Medicine, 2019, 22, No 4, 447-456, DOI: 10.15547/bjvm.2151. The BJVM operates under Creative Commons License BY-NC-ND 4.0.
СВМ № 1/2021


Все
Издания
Карта зообизнеса
Профиль
中文








