Хилоторакс у домашних плотоядных. Часть I (этиопатогенез и диагностика)

Хилоторакс — это выпот лимфы, смешанной с хиломикронами, в плевральную полость. Такое тяжелое нарушение наблюдают в основном у собак и значительно реже у кошек.

Диагноз на данное заболевание ставят на основании рентгенографического исследования и анализа жидкого выпота, который получают методом торакоцентеза. Сама постановка диагноза, в отличие от лечения, которое может оказаться сложным и нерезультативным, трудности не вызывает.

В первой части статьи мы рассмотрим основы анатомии и физиологии грудного протока, знакомство с которыми необходимо для понимания механизмов патогенеза заболевания. Также прилагается синтез библиографических исследований этиопатогенеза и диагностики хилоторакса. Во второй части статьи речь пойдет о лечении заболевания.

1. Основы анатомии и физиологии

Грудной проток (ductus thoracicus) — это наиболее крупный сосуд лимфатической системы у млекопитающих. Его диаметр варьируется в пределах 3–4 мм и играет роль конечного резервуара. Своё начало он берет под поясницей от цистерны (cisterna chyli) — коллектора хилёзной (лимфатической) жидкости брюшного отдела туловища (фото 1, рис. 1). Он тесно связан с аортой на уровне брюшного и грудного отделов. Во время проведения хирургической операции следует быть крайне осторожным при отделении грудного протока от аорты, так как это чревато нарушением его целостности.

Рисунок 1. Грудной проток и другие основные сосуды-коллекторы лимфы (поясничные и висцеральные стволы, правый лимфатический проток). Грудной проток, тесно связанный с аортой, берет свое начало от хилёзной цистерны и заканчивается в венозной сети у входа в грудное отверстие.	Фото 1. Анатомический препарат. Под анатомическим пинцетом визуализируется хилёзная (лимфатическая) цистерна. Следует обратить внимание на тесную взаимосвязь лимфатической цистерны (конец пинцета) с аортой (АО).

Грудной проток проходит через диафрагму дорсально и справа по отношению к аорте. В грудной полости он сопровождает аорту вплоть до краниального отверстия грудной клетки (apertura thoracis cranialis) и, находясь всегда справа по отношению к аорте, изгибаясь влево завершает свой путь в левой яремной вене (v. jugularis sinsistra), плечеголовном стволе (truncus brachiocephalicus) или подключичной вене (v. subclavia).

Грудной проток осуществляет дренирование лимфы тазовых (задних) конечностей, брюшной полости (через цистерну, содержащую лимфатическую жидкость), но только левой грудной конечности, левой половины головы, шеи и грудной клетки.

Правая грудная конечность, как и правая половина головы, шеи и грудной клетки, дренируются другим лимфатическим протоком-коллектором, который называют — правый лимфатический ствол (truncus lymphaticus dexter). Он очень короткий (1 см у собаки среднего размера) и располагается исключительно в шейном отделе, завершая свой путь, обычно, в правой ярёмной вене (v. jugularis dextra).

Анатомия грудного протока у собаки была изучена, в основном, с помощью лимфографии мезэнтериальных лимфоузлов (K.G. Kagan, E.M. Breznock, 1979). Это исследование дало возможность установить, что топография грудного протока в сравнении с общепринятой схемой может иметь разные вариации (рис. 2). Такие данные имеют очень большую практическую значимость в случае необходимости лигирования грудного протока, потому что он может дублироваться до прохождения через хиатус¹ диафрагмы (рис. 2).

---

¹ Хиатус (на лат. — открытие) [англ. hiatus] — открытие или узкая щель. Например, узкая щель в диафрагме для прохождения аорты.

---

Следовательно, необходимо лигировать его ответвления. У кошки архитектоника грудного протока, как правило, носит однотипный характер (S. Jaques et coll., 1978).

Рисунок 2. Морфологические вариации грудного протока у собаки, выявленные путем лимфангиографии. Наиболее часто встречающиеся случаи относятся к типу А. Тем не менее, следует отметить, что в других случаях наблюдают дублирование грудного протока в верхушке диафрагмы.

Центростремительная направленность лимфы в сторону каналов-коллекторов, как, например, грудной проток, вызвана механизмом «тканевого насоса». Под последним подразумевают сокращение мышечной ткани, собирающей лимфу, и изменение внутриполостного давления грудного и брюшного отделов туловища за счёт дыхания. Сюда также следует включить систему клапанов, обеспечивающих однонаправленное движение, и внутреннюю мышечную ткань лимфатических сосудов исключающих рефлюкс (обратный отток) лимфы.

Скорость движения лимфы в грудном протоке и её дебет соответственно равны 3,7 см/сек. (N.L. Browse et coll., 1974) и 50 мкл/мин./кг (H. Schad, H. Brechtelsbauer, 1977). Согласно данным сравнительных исследований скорость движения лимфы в грудном протоке составляет 0,1 скорости крови, выходящей из аорты, тогда как её дебет — 0,04 дебета почки. Эти показатели становятся значительно ниже при анестезии животного и существенно выше во время физических нагрузок, что подтверждает наличие механизма «тканевого насоса».

Лимфа выполняет две функции: транспортировку и реабсорбцию. Реабсорбция жидкости и протеинов в интерстициальном пространстве осуществляется с помощью лимфатических капилляров.

В лимфе содержатся все белки плазмы в концентрации в два раза ниже таковой плазмы крови (30 г/л). В основном это ферменты (например, креатинкиназа), которые от места их секреции транспортируются преимущественно лимфой. Исследования в отношении ферментативной активности лимфы достаточно хорошо описаны (J. Lindena, I. Trautchold, 1983). Лимфа способна коагулировать. Следовательно, ее забор необходимо осуществлять вместе с антикоагулянтом.

Лимфа обеспечивает транспортировку алиментарных жиров, которые перемещаются в ней в форме хиломикронов. Ее форменные элементы — это, в основном, лейкоциты и ничтожно малое количество эритроцитов.

Лимфа представляет собой светлую жидкость  розового цвета. Молочный цвет у лимфы отмечают только в постпрандиальный период.

2. Патогенез

Хилоторакс, как показывают лимфографические исследования, редко возникает по причине разрыва грудного протока (S.J. Brichard et coll., 1982). В основном, отмечают лимфангиэктазию (расширение лимфатического сосуда), что приводит к увеличению пористости его стенки (R.L. Meadows, P.S. McWilliams, 1994), и лимфа выпотевает в плевральную полость. Это единственный патологический механизм, который имеет место при хилотораксе идиопатической природы. Тем не менее, это может быть вызвано препятствием, возникающим на пути оттекающей лимфы, локализующемся в грудном протоке, а также в органах или прилегающих к нему тканей (фото 2). Например, персистенция препятствия на пути венозного оттока в сердце, приводит к увеличению центрального венозного давления.

Фото 2. Анатомический препарат. Грудной проток окрашен в голубой цвет с помощью витальной (прижизненной) окраски. Катетер был введен в грудной проток с целью экспериментального забора лимфы. Катетер был забит сгустками. Следует обратить внимание на дилатацию (лимфангиэктазию) грудного протока (широкая стрелка) в верхушке сгустка. Лимфангиэктазия является причиной экстравазации лимфы в плевральное пространство.

Если обструкция происходит у основания места соединения с грудным протоком, то это осложняется нарушением поступления лимфы в венозную систему и, как следствие, разрешается ее эффузией (выпотеванием). Экспериментально было показано, что лигирование краниальной полой вены у основания плечеголовного ствола, по истечении определенного времени (в среднем через пять дней) провоцирует развитие хилоторакса в сочетании с лимфангиэктазией, возникающей как в средостении, так и в плевральной полости (T.W. Fossum, S.J. Birchard, 1986). Кроме того, эффузия лимфы в плевральную полость, в свою очередь, способна спровоцировать повышение центрального венозного давления и усугубить развитие патологического феномена (J.L. Gookin, 1999).

Совсем недавно в условиях эксперимента было показано, что при развитии хилоторакса лимфатические сосуды легких были гипертрофированными и дилатированными. Вероятно, это говорит о вовлечении в патогенез нарушения лимфатических сосудов средостения и плевры.

При повышении давления в грудном протоке наблюдают увеличение концентрации протеинов (лимфа в основном формируется печенью) и снижение количества хилёзной жидкости в кишечнике (J.R. Elk, G.A. Laine, 1990).

Хилоторакс в начале его развития может быть билатеральным, в связи с относительной проницаемостью средостения, что в основном отмечают у собак. Затем плеврит, возникающий, как правило, вследствие выпота, может иметь лобулярное и латеральное проявление.

3. Эпидемиология

Литература в отношении данной патологии располагает незначительным числом ретроспективных исследований. Тем не менее, это позволяет создать представление о степени его проявления.

Если говорить о породной предрасположенности, то, вероятно, хилоторакс идиопатической природы обнаруживают у афганской борзой, хотя сами авторы (T.W. Fossum et coll., 1986) не придают этому особого значения. В большинстве случаев хилоторакс обнаруживают у средних и крупных пород собак. Имеется лишь один случай описания этой патологии у пуделя (N.C. Myers et coll., 1996). Что касается кошек, то наибольшая предрасположенность отмечена у европейской и гималайской пород (T.W. Fossum et coll., 1968–1989).

Хилоторакс может проявляться независимо от возраста, но идиопатическую природу его чаще отмечают в 5–6-летнем возрасте (T.W. Fossum et coll., 1969-1989).

4. Природа хилоторакса

Этиология возникновения хилоторакса изучена недостаточно. Согласно данным литературы, природу его возникновения можно разделить на семь основных категорий.

4.1. Идиопатическая

В связи с тем, что этиотропный фактор хилоторакса выявляют редко, то часто прибегают к термину «идиопатический». Согласно ретроспективным исследованиям T.W. Fossum et coll. (1986), идиопатическая природа хилоторакса у собак (34 клинических случая) составляет 70%. Аналогичные данные были получены на кошках (75% случаев) (T.W. Fossum et coll., 1991). Идиопатическа природа хилоторокса у этих животных была описана в сочетании с перитонео-перикардиальной грыжей (S.T. Kerpach et coll., 1994).

У человека эту форму аномалии считают первичной.

4.2. Конгенитальная

У человека описана наследственная природа хилоторакса (M.S. Williams, K.D. Josephson, 1997). Он может ассоциироваться с более тяжелыми нарушениями, как, например, с аномалиями развития сердца.

В литературе ветеринарной медицины фигурирует клинический случай аномалии соединения грудного протока с венозной системой у афганской борзой (P.F. Sutter, R. Greene, 1971). Эти данные были получены от молодой собаки в возрасте двух лет, что позволило авторам прийти к заключению о врожденной природе патологического процесса. Клинический случай хилоторакса, ассоциирующийся с нарушением формирования грудного протока, был описан также у кошки (J. Berg, 1982).

4.3. Онкологическая

Некоторые новообразования в грудной полости, локализующиеся в краниальном отделе средостения, способны провоцировать развитие хилоторакса. В литературе, в основном, речь идет о тимомах (A.E. Peston et coll, 1990), медиастинальных лимфангиосаркомах у собак и кошек (N.C. Myers et coll., 1996; D. Stobie, J.L. Carpenter, 1993), а также о лимфобластных лимфосаркомах (S.D. Forester et coll., 1991), и совсем недавно появилось сообщение о лимфосаркомах легочной (висцеральной) плевры у собаки (J.E. Waldrop et coll, 2001). Они провоцируют увеличение центрального венозного давления за счет компрессии и, иногда, инвазии в краниальную полую вену (A.E. Peston et coll, 1990).

4.4. Кардиогенная

Некоторые кардиопатии, затрагивающие, в основном, правое сердце (при эхокардиографическом исследовании выявляют увеличение правого предсердия и желудочка), могут привести к развитию хилоторакса. Причины возникновения первичной сердечной патологии могут быть разными: дисплазия трехстворчатого клапана, тетрада Фалло, хемодектома, охватывающая корень легочного ствола и опирающаяся на правое ушко или кардиомиопатия с дилатацией предсердия и/или желудочков (T.W. Fossum et coll. 1994; S.J. Birchard et coll., 1986), способная вызывать регистрируемое на ЭКГ серьезное нарушение — синдром «молчащего предсердия» (B.J. Gavaghan et coll., 1999), что вызывает при этом необходимость, в первую очередь, выявить причину заболевания органа.

Перикардиальные нарушения также могут быть ответственны за развитие хилоторакса (S.J. Birchard et coll., 1995).

4.5. Травматическая/ятрогенная

Эта причина раньше была описана и изучена у человека (J.S. Ikonomidis et coll., 1997), и только позже у домашних плотоядных. Один клинический случай возникновения хилоторакса после иссечения доли легкого наблюдали у афганской борзой (A.R. Gelzer et coll., 1997). Описания травматического хилоторакса у собак датируются до начала проведения системного лимфографического исследования (E.R. Graber, 1965; D.F. Patterson, T.D. Munson, 1958; C.A. Stonesifer, W.F. Moffett, 1974). Тем не менее, в литературе фигурируют случаи травматического хилоторакса у собак по причине заглатывания кости, травмы во время несчастного случая (D.F. Patterson, T.D. Munson, 1958) и вследствие непрекращающихся рвот (C.A. Stonesifer, W.F. Moffett, 1974), без чего невозможно объяснить утечку лимфы.

Имеется два сообщения о возникновении хилоторакса в сочетании с диафрагмальной грыжей у кошки, который обнаружили при проведении хирургической операции (J.E. Meinke et coll., 1969). Согласно авторам, это, вероятно, было связано с травматическим разрывом грудного протока, в ассоциации с сопутствующими нарушениями (например, с диафрагмальной грыжей).

4.6. Инфекционная/паразитарная

В литературе имеются сообщения о случаях обнаружения вторичного хилоторакса, вызванного компрессией гранулем фунгоидной природы (криптококкоза, бластомикоза) приводящей к развитию лимфангиэктазии (R.L. Meadows et coll., 1993; M.D. Willard, J.D. Conroy, 1985; J. Howard et coll., 2000).

Также в литературе описаны случаи возникновения хилоторакса у кошек, подверженных экспериментальному (J.M Donahoe et coll., 1974) или естественному заражению дирофиляриозом (Dirofilaria immitis) (S.J. Bichard, S.B. Bilbrey, 1990; T.M. Glaus et coll., 1995).

Плевриты бактериальной природы встречаются часто, но в основном это приводит к развитию пио- или гемоторакса (E.C. Orton, 1993). В литературе отсутствует информация о хилотораксе бактериальной природы. Тем не менее, при повторном пунктировании плевральной полости в случае сомнений рекомендуется провести бактериологический анализ выпота с целью исключения пиоторакса.

4.7. Сочетанная

Причиной может быть любое сочетание вышеуказанных пунктов.

5. Диагностика

5.1. Клинические признаки

У животных, страдающих хилотораксом, в большинстве случаев наблюдают преобладание симптомов респираторного заболевания (N.C. Miers et coll., 1996; T.W. Fossum et coll., 1991). Диспноэ составляет 70–80% случаев, при этом можно констатировать наличие сухого и непродуктивного кашля (25–30%). Во время проведения клинического обследования у животных обнаруживают признаки нарушения общего состояния: слабость, непереносимость физических нагрузок, анорексию, рвоту, исхудание. Температура тела при этом соответствует норме.

Ретроградный или тургесцентный (вздутый или ундулирующий) пульс яремной вены (нарушение венозного оттока) наблюдают в основном при патологии сердца (T.W. Fossum et coll., 1994) или нарушении венозного оттока. Животное в покое принимает позу сфинкса. Во время аускультации отмечаются изменения в легком и сердце: снижение тонов работы сердца и увеличение респираторных шумов.

Очень важным семиологическим приемом является перкуссионное обследование грудной клетки, с помощью которого удается выявить границы зон с притупленным звуком. В связи с тем, что развитие хилоторакса может нести билатеральный характер, приёмы семиологического исследования повторяют с обеих сторон грудной клетки. Отеки можно наблюдать на лицевой поверхности головы, шее, грудине, в подвздошной области и на задних конечностях. Наиболее часто их наблюдают в случае лимфангиэктазии кишечника (T.W. Fossu et coll., 1987), вследствие нарушения венозного дренирования с проявлением гипотермии.

5.2. Рентгенография

В случае предположения о наличии хилоторакса наиболее перспективным методом исследования грудной клетки является рентгенография. Как правило, ретгенограммы выполняют в двух проекциях: латеральной (с левой или правой стороны) и, преимущественно в дорсовентральной (E.C. Orton, 1993), а не вентрдорсальной, при которой может усугубиться состояние диспноэ.

У кошек или собак небольших размеров проведение рентгенографии в краниокаудальной проекции (животное в положении стоя на задних конечностях, рентгеновские лучи направлены вдоль основной оси длины тела) позволяет исследовать средостение спереди. Подтверждение выпота основывается на обнаружении следующих рентгенографических признаков: перситенции рентгеноконтрастной жидкости, снижающей контрастность соседних структур, локализующихся, в основном, в средостении (аорты, краниальной или каудальной полых вен и силуэта сердца) и визуализации междольковых пространств легких (фото 3а). Выпот может быть билатеральным или, обычно, в одной из сторон грудной клетки (фото 3б), как это наиболее характерно, в частности, для кошки, у которой, в отличие от собаки, проницаемость средостения менее выраженная.

Фото 3А и 3В. Рентгенография. Выпот в грудную полость.
Фото 3А. У собаки: следует обратить внимание на почти полное исчезновение силуэта сердца, а также диффузное уплотнение легочного поля и визуализацию междольковых щелей.	Фото 3В. У кошки: выпот значительно чаще выявляется на одной половине грудной клетки, так как средостение у представителей данного вида обладает меньшей проницаемостью, в отличие от собаки.

С помощью рентгенографического исследования можно выявить также наличие образования и/или зоны уплотнения в легких. Образования лучше идентифицировать в случае проведения повторной рентгенографии после аспирации жидкого выпота методом торакоцентеза.

Проведение рентгенографии с осуществлением при этом необходимых манипуляций с животным возможно при отсутствии у пациента диспноэ. В противном случае вместо рентгенографии предпочтительнее проведение торакоцентеза, что позволяет предотвратить острую декомпенсацию аппарата дыхания и, следовательно, драматические последствия.

5.3 Пункция грудной клетки и исследование выпота

Пункция грудной клетки с последующим анализом выпота — это основной этап дифференциальной диагностики заболевания. Пункцию можно выполнять также для срочного оказания терапевтической помощи в случае выраженного снижения функциональной деятельности респираторного аппарата или для повторной эвакуации жидкости (фото 4). Техника пунктирования грудной клетки аналогична таковой, используемой для эвакуации любого плеврального выпота (табл. 1) (G. Chanoit, 1999).

Таблица 1. Материал, место и способ пунктирования плеврального выпота.

Материал	Место пунктирования	Способ
Игла (диаметр 0,9–1,2 мм) или катетер Трехходовой кран Перфузионная трубка	Пункцию осуществляют в нижней трети грудной клетки на уровне 7-го или 8-го межреберных пространств у животного, находящегося в положении стоя	1. Ввести иглу под углом 45–90 градусов по отношению к сагиттальной плоскости 2. Пункцию можно осуществлять с помощью иглы, надетой на шприц, или иглой без шприца 3. Перфузионную трубку подсоединяют к игле 4. Трехходовой кран фиксируют к перфузионной трубке и удаляют содержимое из плевральной полости, без лишних манипуляций иглой, предотвращая попадание воздуха в плевральную полость

Цвет выпота при хилотораксе или пиотораксе может быть одинаковым (фото 5). Следовательно, наличие этого признака недостаточно для постановки окончательного диагноза.

Фото 4. Пункция грудной полости у кошки с помощью иглы, оснащенной трехходовым краном и введенной под углом 45 градусов. Характеристики полученного выпота могут позволить сделать предположение о развитии хилоторакса.	Фото 5. Хилёзный выпот. Следует обратить внимание на молочный цвет полученного образца, который не исчезает после центрифугирования. Может быть выполнено определенное количество исследований. Для этого выпот необходимо собрать в сухую пробирку, а также в пробирки, содержащие EDTA и цитрат натрия.

Хилёзный выпот, в отличие от периферической лимфы (см. выше «Основы анатомии и физиологии»), не коагулирует.

При однократном заборе материала мы проводим макро- и микроскопическое исследование (тесты представлены в таблице 2). Это позволит отличить хилёзную жидкость от псевдохилёзной (жидкость, сильно обогащенная кристаллами холестерола, придающими ей цвет молока), которую обнаруживают при некоторых заболеваниях, например, в случае туберкулёза у собаки.

Таблица 2. Характеристики лимфы, псевдолимфы и гнойного выпота (эксудата).

Характеристики	Лимфа	Псевдолимфа	Гнойный эксудат
Вид Центрифугирование	Молочный цвет Сохранение мутности	Молочный цвет Сохранение или отсутствие мутности	Нарушение Наличие осадка во время центрифугирования
Окраска красным суданом 3 или 4 (хиломикроны)	+	–	–
Осветление при воздействии эфиром	+	–	–
Общее содержание липидов	Более или равно 40 г/л	Менее или равно 40 г/л	–
Соотношение холестерол/триглицеридов	Менее 1	Более или равно 1 (холестерол ++++)	–
Клетки/мм3	Слабое (545–4700)	Умеренное (2300–15000)	Повышенное (более 50000)
Цитология	Лимфоциты (малые и большие), жировые шарики	Нейтрофилы сегментоядерные	Присутствие бактерий и дегенерированных гранулоцитов

Наиболее простым и недорогим является тест на взаимодействие с эфиром: выпот, представляющий собой хилёзную жидкость, в данном случае осветляется. Существуют и другие, более специфические тесты, например, окраска красным суданом (положительный тест на хиломикроны) (фото 6).

Фото 6. Окраска выпота красным суданом. Следует обратить внимание на жировые вакуоли, а также на наличие красного цвета, свидетельствующее о присутствии хиломикронов (×400).

Также проводится биохимический анализ выпота, с помощью которого устанавливают концентрацию содержащихся триглицеридов и соотношение количественных показателей холестерола и триглицеридов (С/Т). Высокая концентрация в выпоте триглицеридов (более 800 мг/дл) и соотношение С/Т менее 1 позволяют сделать вывод о наличии хилоторакса (T.W. Fossum et coll., 1986). Этот тест остается достоверным, даже если хилёзная жидкость теряет молочный цвет (длительный период анорексии животного).

В выпоте хилёзной жидкости, как правило, содержится небольшое количество клеточного материала. Преимущественно мы находим лимфоциты. Персистенция большого количества клеток других популяций (нейтрофилов, моноцитов и т.д.) свидетельствует о развитии инфекционного процесса.

5.4. Лимфангиография

Такой метод дополнительного исследования, как лимфангиография, позволяет визуализировать грудной канал и, в отдельных случаях, его коллатерали (S.J. Bichard et coll., 1982; T.W. Fossum et coll., 1985; J.F. Skelley et coll., 1964). Этот метод основан на введении в грудной проток через мезэнтериальный лимфатический сосуд жирорастворимого йодированного контрастного вещества (Lipiodol Ultra-fluide, 480 мг йод/мл) или менее токсичного водорастворимого (йопамиро или омнипак 300 мг йода/мл) (фото 7). В таблице 3 подробно описан способ хирургического вмешательства, осуществляемый с целью проведения лимфангиографии.

Фото 7. Мезэнтериальная лимфангиография. Катетер диаметром 0,8–0,9 мм введен в мезэнтериальный лимфатический сосуд. Перфузионная трубка и катетер с контрастным веществом фиксированные в лимфатическом сосуде с помощью лигатуры.

Фото 8. Обычная лимфангиография. Следует обратить внимание на прямую линию грудного протока в дорсальной части грудной клетки. Следует также обратить внимание на сеть венозных сосудов, визуализируемых в форме уплотнения (каудальная и подключичная вены) (широкая стрелка), и правое предсердие (тонкая стрелка). Дренирование грудной клетки визуализируется в ее дорсальной части, то есть на уровне грудного протока.

Грудной проток визуализируется в дорсальной части грудной клетки (фото 8). Многочисленные системные исследования случаев образования хилёзного выпота в грудной полости свидетельствуют о том, что хилоторакс в основном возникает вследствие лимфангиэктазии, а не по причине чисто механического повреждения целостности грудного протока. Лимфангиография показана при постановке предварительного диагноза на идиопатическую природу хилоторакса и при получении отрицательных результатов консервативной терапии.

Таблица 3. Метод мезентеральной лимфангиографии.

1. Право- или левосторонняя паракостальная лапаротомия.

2. Слегка подтягивают петлю тощей кишки, расправляют ее, затем в брыжейке находят лимфатические сосуды.

3. Катетер малого диаметра [0,7 (24G) или 0,9 (22G) мм] вводят в лимфатический сосуд и фиксируют с помощью нитей dec 2 или dec 3.

4. Перфузионную трубку фиксируют к катетеру.

5. Высвобожденную петлю кишечника на протяжении всей манипуляции необходимо накрыть влажным компрессом.

6. В зависимости от размеров животного контрастное водорастворимое йодированное вещество (менее токсичное, чем жирорастворимое) вводится в объеме от 5 до 15 мл**.

7. Рентгенографическую съёмку осуществляют сразу после инъекции.

Примечание. * Для лучшей визуализации лимфатических сосудов во время проведения лимфангиографии, животное должно получать корм, обогащённый жиром (растительное масло или сметана, одна столовая ложка на 5 кг веса животного). Лимфатические сосуды могут быть промаркированы также метиленовой синью. ** Йопомиро или омнипак 300 (300 мг йод/мл), используют для субарахноидального и внутрисосудистого введения.

5.5. Другие методы дополнительного исследования

С целью выявления выпота в грудной полости и визуализации структур внутри грудной клетки (медиастинальные лимфатические узлы, средостение) прибегают к эхографическому исследованию. Чаще всего к эхографии прибегают при подозрении наличия у пациента первичной кардиопатии, в основном, наблюдаемой у кошек.

Анализы крови могут быть выполнены, но они не несут патогномоничных признаков.

Путем общих фундаментальных исследований животных, страдающих развитием хилоторакса, мы можем выявить у них лимфопению, лейкоцитоз или лейкопению, а иногда и гипопротеинемию.

В литературе имеется также описание лимфосцинтеграфического исследования собаки. Оно заключается во введении в организм животного и последующем обнаружении радиоизотопа, в основном Технеция-99. Его обнаруживают в грудном протоке в случае лимфангиэктазии (расширении лимфатического протока).

Другие известные рутинные методы диагностики менее достоверны. В результате проведения экспериментальных исследований установлено, что лимфангиэктазию грудного протока удается выявить лишь у 50% собак (C.C. Hodges et coll., 1992).

СВМ 1/2007