Реконструкция дефектов челюстно-лицевой области с применением локорегионарных лоскутов, ч.2

(Реконструкция дефектов челюстно-лицевой области. Окончание. Начало в СВМ № 6/2023)

Ротационный полнослойный лоскут щеки представляет собой полукруглый лоскут, который перемещается на близлежащее реципиентное ложе за счёт поворота на ножке. Несмотря на то что лоскут вращается в своём направлении, закрытие дефекта происходит в том числе и за счёт растяжения эластичных тканей [76]. Идеальные условия для применения такого лоскута — дефект треугольной формы. Лоскут поворачивается максимум на 90° от оси дефекта. Соотношение высоты и ширины треугольника в идеале должно составлять 2:1. Длина лоскута должна быть в 4 раза больше ширины основания треугольного дефекта [76]. Большие дефекты губ с недостаточным количеством оставшейся ткани на той же челюсти могут быть восстановлены с помощью ротационного лоскута, с использованием губы противоположной челюсти. Эта методика была описана как для верхней, так и для нижней губы, а также для реконструкции носа [41; 42; 95; 101]. За счёт вращения ткани спайка губ перемещается вперёд дорсально или вентрально, что приводит к небольшой асимметрии лица с односторонним укорочением ротовой щели. Это считается незначительным косметическим изменением (илл. 8).

Илл. 8. Полнослойный локальный ротационный лоскут для закрытия дефекта нижней губы у собаки. (А) Злокачественная меланома полости рта ростральной части нижней губы. (B) Забор лоскута. (C) Непосредственный послеоперационный вид. (D) Внешний вид через 6 месяцев после операции

Каудальный ушной кожно-мышечный аксиальный лоскут может быть использован для закрытия дефектов в каудальной части лица, а именно на щеке, глазничной области и теменно-височной области (верхняя часть лица) [102]. Основание (краниальная граница) лоскута расположено по центру между крылом атланта и вертикальным слуховым проходом. Лоскут основан на грудино-ключично-сосцевидных ветвях каудальной ушной артерии и вены, обеспечивающих кровоснабжение платизмы, с перфорирующими ветвями, проходящими в подкожную клетчатку и вышележащую кожу. Плоскость рассечения проходит прямо над шейной фасцией (илл. 9). Анастомозы с поверхностной шейной артерией могут расширить конструкцию лоскута до ости лопатки [67; 103]. Аналогичная анатомия была описана у собак и кошек [68]. В оригинальном экспериментальном исследовании и описании методики на собаках сообщалось о средней выживаемости длины лоскута в 85,2% [103]. В аналогичном исследовании на кошках с использованием лоскутов шириной 3 см и различной длиной 6, 9 и 12 см сообщалось о развитии некротического процесса на дистальном конце лоскута в 75% случаев, при среднем сохранении длины в 93,8%, 81,9% и 84,4% соответственно. В отчётах об операциях с применением этого метода, проведённых на 2 домашних кошках, сообщалось о хорошем результате после транспозиции лоскутов для закрытия дефектов околоушной и периорбитальной зон, но с использованием более широких лоскутов размером 4×10 и 5×12 см соответственно [67]. Впоследствии каудальный ушной кожно-мышечный лоскут с осевым кровоснабжением также был успешно использован для закрытия дефектов после экзентерации или реконструкции верхнего века у собак и кошек [104–107]. Недавно проведённое многоцентровое ретроспективное исследование на 16 собаках и 12 кошках показало относительно высокую частоту осложнений с некрозом дистальной части лоскута у 62,5% собак и 41,7% кошек, что потребовало повторной операции у 72,7% собак и 50% кошек с осложнениями. Некроз затрагивал 10–25% длины лоскута у собак и 25–50% — у кошек. Следует отметить, что размеры лоскута в этом ретроспективном исследовании были больше, чем в экспериментальном исследовании, со средней шириной 6,5 см у собак и 5 см у кошек и средней длиной 19 см у собак и 16 см у кошек. На основании этих данных авторы рекомендуют сокращать планируемую длину лоскута, а также избегать, насколько это возможно, любых факторов, которые могут ухудшить кровоснабжение (например, чрезмерное натяжение или перекрут ножки, тромбоз, инфекция), чтобы повысить шансы на приживание лоскута [102].

Илл. 9. Схема, изображающая анатомические ориентиры и угол вращения каудального ушного кожно-мышечного аксиального лоскута

Илл. 10. Схема, изображающая анатомические ориентиры и угол вращения поверхностного височного кожно-мышечного аксиального лоскута

Поверхностный височный кожно-мышечный аксиальный лоскут, впервые описанный Fahie с соавт. [68] у собак и кошек, основан на кожной ветви поверхностной височной артерии, берущей начало у основания скуловой дуги [68]. Анатомические ориентиры и жизнеспособность лоскута были экспериментально изучены на собаках [69]. Основание лоскута приблизительно соответствовало длине скуловой дуги, поскольку ширина лоскута ограничена рострально глазом и каудально ухом (илл. 10). Через 7 дней после операции лоскуты, простирающиеся до средней линии головы, показали значительно лучшую выживаемость по длине (91,8%), чем лоскуты, простирающиеся до контралатеральной скуловой дуги (69,5%), или лоскуты в контрольной группе с перевязкой сосудов. О нарушениях смыкания век не сообщалось, хотя черепная ветвь, отходящая от ушного сплетения, была пересечена для облегчения вращения лоскута. Зона забора лоскута была закрыта простым сведением краёв раны. Из-за риска обширного некроза дистального конца было решено избегать вытягивания лоскута за пределы контралатерального срединно-дорсального края орбиты и вращения основания на более чем 90° [69]. Впоследствии поверхностный височный кожно-мышечный лоскут был успешно использован у домашних собак и кошек для закрытия дефектов, затрагивающих верхнечелюстную, орбитальную или носовую области [69]. Ростральный размер лоскута в области верхней челюсти зависит от конкретной формы головы. Самых лучших результатов от применения данной техники можно достичь у брахицефальных собак и кошек (илл. 11).

Илл. 11. Закрытие обширного лицевого дефекта поверхностным височным кожно-мышечным аксиальным лоскутом у собаки с инвазивной злокачественной меланомой полости рта. (А) Планирование хирургического вмешательства. (В) Интраоперационный вид после удаления щеки и каудальной части верхней челюсти. (C) Непосредственный послеоперационный вид. (D) Внешний вид через 1,5 месяца после операции

Илл. 12. Схема, изображающая анатомические ориентиры и угол вращения лицевого (angularis oris) аксиального лоскута

Лицевой кожно-мышечный аксиальный лоскут — это универсальный лоскут, позволяющий закрывать дефекты мягких тканей лица у собак и кошек [108–112]. Его можно использовать для закрытия дефектов как верхней, так и нижней челюсти. Анатомическими границами этого U-образного кожного лоскута являются спайка губы на уровне медиального выступа глаза (основание), вентральный край скуловой дуги (дорсально), вентральный край каудальной части нижней челюсти (вентрально) и крыло атланта (каудально) [111]. Основание лоскута кровоснабжается прямыми кожными артериями, отходящими от верхней, нижней губной артерий и артерии угла рта, которые являются ветвями лицевой артерии; эти ветви проникают в платизму и проходят через неё [111]. Дистальный конец лоскута также васкуляризирован 2 прямыми артериями, проходящими в ростральном направлении: поперечной лицевой артерией и кожной ветвью жевательной артерии; они анастомозируют с отдельной кожной ветвью артерии угла рта, проходящей каудально к области слухового прохода [111; 112] (илл. 12). Конструкция лоскута должна быть тщательно спланирована до проведения резекционной операции путём измерения размера образовавшегося дефекта и его расстояния от основания лоскута, чтобы обеспечить полное закрытие дефекта. Границы резекции и лоскута очерчиваются стерильным хирургическим маркером. Для проектирования лоскута можно также использовать шаблон, созданный путём вырезания куска хирургической ткани. Кожу и поверхностную мышцу рассекают лезвием скальпеля и проводят рассечение глубоко под платизмой тупоконечными ножницами для расслоения в каудально-ростральном направлении. Рекомендуется соблюдать осторожность при приближении к углу рта, чтобы сохранить сосуды артерии угла рта. Дорсовентральная линия, проведённая от медиальной спайки век и перпендикулярная оси тела нижней челюсти, может быть использована в качестве безопасной ростральной границы [111]. Были опубликованы 2 небольшие серии кожно-мышечных транспозиционных лоскутов angularis oris у собак [108; 112]. В большинстве случаев для лечения дефектов средней части лица использовался лоскут, повёрнутый дорсально. Losinsky и соавт. [112] сообщили об исходе транспозиции 9 лоскутов у 8 собак. Результаты были хорошими, серьёзных осложнений не наблюдалось. Частичное послеоперационное расхождение дистального конца лоскута было замечено у 3 собак, причём у 2 из них была обнаружена небольшая область некроза (<1 см); дефект зажил вторичным натяжением у одной из собак и после небольшой ревизионной операции ещё у 2 [112]. Frasson и соавт. [108] сообщили об исходе лоскута у 6 собак. У 3 из 6 лоскутов наблюдалось минимальное расхождение швов, но все лоскуты зажили без некроза какой-либо части лоскутов и не потребовали ревизионной операции [108]. В обеих сериях каудальной границей лоскута был либо вертикальный наружный слуховой проход, либо крыло атланта, в зависимости от подлежащего закрытию дефекта (илл. 13, 14). Прямой зависимости между длиной лоскута и расхождением и/или некрозом дистального конца не было установлено. Отёк лоскута лёгкой и умеренной степени был наиболее распространённым незначительным осложнением [108; 112]. Недавно была задокументирована модификация этого лоскута в небольшой серии случаев у 3 собак с реконструкцией большого нёбного дефекта. Вентрально на уровне последнего коренного зуба нижней челюсти делается мостовидный разрез во всю толщину, чтобы обеспечить транспозицию лоскута в ротовую полость. Несмотря на то что участок лоскута, сохранивший волосяной покров, оставался в полости рта, в этой короткой серии не сообщалось ни о каких серьёзных осложнениях [113].

Илл. 13. Реконструкция сложного дефекта нижней части лица лицевым (angularis oris) кожно-мышечным аксиальным лоскутом. (А) Комбинированная резекция нижней челюсти и нижней губы у собаки с нейрофибросаркомой. (В) Хирургическая подготовка лоскута. (C) Внешний вид сразу после операции. (D) Внешний вид через 9 месяцев после операции

Височный мышечно-фасциальный лоскут был описан у собаки Tomlinson и Presnell [114] для закрытия орбитоназального дефекта диаметром 3 см, вторичного по отношению к экзентерации орбиты и лучевой терапии [114]. В другой статье сообщается об использовании этого лоскута для закрытия каудального ороназального свища диаметром 15 мм у собаки после каудальной максиллэктомии с экзентерацией и лучевой терапией [115]. Кроме того, в экспериментальном исследовании, опубликованном в 1996 году, оценивалась осуществимость и исход этого метода после тотальной односторонней челюстно-лицевой резекции у 30 кошек [116]. Мышечно-фасциальный лоскут основан на ростральной и каудальной глубоких височных артериях. Делается криволинейный разрез кожи между глазницей и ухом. Обнажается височная фасция, покрывающая височную мышцу. Височную кость извлекают по окружности из височной ямки, надрезая её прикрепление к височной линии до сагиттального гребня дорсально, к затылочному гребню каудально, к скуловой дуге латерально и к каудальным краям орбиты рострально [114–116]. Во время поднятия лоскута тщательно сохраняются глубокая височная артерия и вена, расположенные вентро-медиально, а также места прикрепления мышцы над венечным отростком нижней челюсти. Транспозиция лоскута в ротовую полость выполняется после туннелизации под орбитой. Лоскут накладывается поверх дефекта так, чтобы фасция была обращена к полости рта [116]. Для облегчения мобилизации лоскута была предложена остэктомия части скуловой дуги или остеотомия венечного отростка нижней челюсти [114; 116]. Сообщалось о хороших клинических результатах у кошек, несмотря на более длительное время заживления по сравнению с людьми. Покрытие гладкой слизистой оболочкой полости рта было достигнуто у подопытных кошек через 18–24 недели после операции [116]. Показания к использованию лоскута височной мышцы у людей включают устранение дефектов, затрагивающих ипсилатеральную верхнюю челюсть и нёбо, боковую стенку ротоглотки и ретромолярную область [117; 118]. На данный момент имеется ограниченная документация о клиническом применении этого лоскута для лечения больших ороназальных свищей у собак и кошек.

Илл. 14. Реконструкция сложного дефекта средней части лица лицевым (angularis oris) кожно-мышечным лоскутом. (А) Хирургическое планирование операции с указанием хирургических границ (наклонная пунктирная линия) и контура лоскута. (В) Комбинированная резекция орбитозигоматико-челюстной области у собаки с остеосаркомой. (C) Немедленный послеоперационный внешний вид. (D) Внешний вид через 4 месяца после операции

Были предложены более удалённые лоскуты осевого типа, такие как поверхностный шейный кожно-мышечный лоскут, хотя, насколько известно авторам, возможности их применения для реконструкции лица ещё не полностью изучены [79]. Поскольку перемещение в каудальную полость рта уже было описано (см. предыдущий раздел), возможно восстановление дефектов, затрагивающих верхнюю часть лица и каудальную часть нижней и средней части лица (щеки) [94].

Алгоритм принятия решений

Чтобы помочь клиницисту спланировать этап реконструктивной операции после резекционной или челюстно-лицевой хирургии, мы предложили алгоритм принятия решений, основанный на современной литературе (илл. 15). При рассмотрении реконструкции челюстно-лицевых дефектов в первую очередь следует рассматривать самую простую и наиболее подходящую технику в порядке возрастания сложности [53; 60]. Поскольку сложность процедуры может ещё больше повлиять на продолжительность анестезии и её результат, клиницист должен также обратить внимание на её надёжность, а также на её временную и экономическую эффективность. Процесс принятия решения начинается с тщательной оценки процедуры резекции, чтобы соответствующим образом спланировать реконструктивный метод [13–29]. Небольшие дефекты, затрагивающие поверхностные слои мягких тканей, иногда можно устранить путём вторичного заживления, при условии, что осмотр и особый уход за раной являются удовлетворительными, без высокого риска фиброза или инфицирования участка. Как правило, предпочтительнее закрытие раны локальными тканями или применение лоскутов. Некоторые более глубокие, умеренно обширные дефекты также могут быть успешно устранены прямым закрытием раны или локальными лоскутами со случайным кровоснабжением, когда это возможно. При более серьёзных дефектах (от средних до крупных) предпочтительным методом являются лоскуты с локорегионарным осевым кровоснабжением. Они могут сочетаться с другими техниками. Они позволяют восстановить анатомический барьер между полостью рта, полостью носа и/или кожным покровом с целью сохранения функции. Выбор подходящего лоскута зависит от локализации дефекта. Как правило, предпочтителен ближайший доступный лоскут, поскольку для более удалённого места забора может потребоваться более длинный лоскут, и это может быть связано с более высоким риском некроза дистального края лоскута. Когда конкретная процедура может привести к чрезмерному риску расхождения (например, недостаточный размер, нарушенная васкуляризация, чрезмерное натяжение) или когда есть риск развития функциональных нарушений, следует рассмотреть следующий тип лоскута в алгоритме принятия решения. Лоскуты с низкой научной обоснованностью, а также те, для которых требуются высококвалифицированные бригады и специализированное оборудование (например, свободные васкуляризированные лоскуты), рассматриваются в качестве крайней меры. Лоскуты на основе лицевой артерии кажутся более универсальными и надёжными и, благодаря их анатомической близости, в настоящее время используются в большинстве ситуаций при первичном закрытии челюстно-лицевых дефектов.

Схема15

Илл. 15. Алгоритм принятия решений

Периоперационный уход

Периоперационный уход считается фундаментально важным в хирургии головы и шеи и, как было показано, влияет на исход у людей [119; 120]. Поскольку в ветеринарной медицине нет задокументированных данных на этот счёт, врач может извлечь пользу для ветеринарных пациентов из опыта гуманитарной медицины.

Антибиотики

Антибиотикопрофилактика рекомендуется при проведении челюстно-лицевой реконструктивной хирургии, поскольку раневая поверхность располагается в полости рта или носа, из-за чего риск инфицирования раны резко возрастает [119; 121; 122]. Тип и продолжительность лечения антибиотиками у людей были предметом длительных дискуссий. В настоящее время ампициллин + сульбактам, амоксициллин + клавуланат и цефазолин считаются антибиотиками выбора и применяются в послеоперационном периоде в течение 24–48 часов [75; 119–123]. Некоторые исследования показали, что клиндамицина следует избегать в послеоперационном периоде при операциях на свободном лоскуте у людей, поскольку было обнаружено, что он связан с худшим исходом из-за его неэффективности в отношении грамотрицательных бактерий [121; 122]. Сообщений об использовании антибиотиков при операциях на голове и шее у собак и кошек немного. В некоторых отчётах приводятся рекомендации по применению антибиотиков, взятые из гуманитарной медицины [6; 88; 112; 113]. В крупном ретроспективном исследовании, касающемся лоскутов с магистральным кровоснабжением у собак и кошек, антибиотики применялись после операции у 88% животных, а инфекции в месте операции были зарегистрированы у 28% пациентов [81]. В этом ретроспективном исследовании не было обнаружено существенного влияния предоперационного и послеоперационного приёма антибиотиков ни на исход, ни на частоту осложнений [81]. Поскольку никаких специальных исследований в области ветеринарии не проводилось, мы рекомендуем следовать протоколам применения антибиотиков для людей при проведении реконструктивных операций на голове и шее.

Установка дренажей

Операции на голове и шее связаны с клинически значимыми послеоперационными осложнениями, такими как гематома, отёк, инфекция и осложнения, связанные с лоскутом. Хирурги могут прибегать к использованию дренажных систем для уменьшения этих осложнений [124; 125]. Однако решение об установке дренажа основывается на индивидуальных случаях, опыте и предпочтениях хирургов [126]. Недавнее национальное исследование в Ирландии показало, что в отношении показаний к установке дренажей существовали неопределённые рекомендации и значительная неоднородность среди хирургов [127]. Не было обнаружено существенной разницы в частоте осложнений между активным и пассивным дренированием после реконструкции свободным лоскутом при операциях на голове и шее у людей [124]. Большая неоднородность исследований также обнаруживается и в ветеринарной литературе. В недавнем ретроспективном исследовании лоскутов на подкожном сосудистом сплетении у собак и кошек активный дренаж был установлен в 11% случаев, а пассивный — в 26% случаев в соответствии с предпочтениями хирурга [78]. В ретроспективном исследовании результатов применения лоскутов с осевым кровоснабжением у собак и кошек раневые дренажи были использованы у 66% собак и 38% кошек и удалены в среднем через 2 дня у собак и 3 дня у кошек [81]. Было показано, что установка дренажа и продолжительность его проведения не оказывают существенного влияния ни на исход, ни на частоту осложнений [81]. В другом исследовании, посвящённом каудальному ушному аксиальному лоскуту у 16 собак и 12 кошек, активный дренаж использовался только у 18% собак и 8% кошек [102]. Таким образом, до тех пор, пока не будут проведены исследования для сравнения результатов с применением дренажей или без них, а также влияния на исход типа дренажа, решение по данному вопросу остаётся за хирургом в зависимости от конкретного случая.

Обезболивание

Эффективное обезболивание основано на мультимодальном подходе, сочетающем опиоиды, неопиоидные анальгетики и различные методы регионарной анестезии для контроля боли на разных путях её проведения [82; 89]. В клинике авторов обезболивание достигается сочетанием локорегионарной анестезии с использованием ропивакаина и постоянной инфузии лекарственных препаратов (опиоидов, лидокаина, кетамина или дексмедетомидина) в течение первых 24–48 часов после операции [6; 62; 78]. Другие лекарственные средства, которые могут быть использованы, включают нестероидные противовоспалительные препараты и габапентиноиды. В недавнем системном обзоре на людях габапентин и прегабалин продемонстрировали значительный положительный эффект при операциях на голове и шее в течение первых 24 часов [90; 91]. Степень и продолжительность послеоперационного обезболивания зависят от типа операции и оценки боли пациентом в соответствии с действующими рекомендациями [92]. Чем меньше животное страдает от боли, тем быстрее начинается приём пищи и выздоровление.

Питание

Пациенты, страдающие от опухолей полости рта, зачастую уже потеряли вес на момент операции. Предоперационное недоедание у людей является хорошо документированным фактором риска периоперационных осложнений и неблагоприятного исхода [81]. Решение о возобновлении перорального приёма пищи варьируется в зависимости от хирурга и учреждения, но обычно он начинается через 5–7 дней после операции в области рта/глотки и верхних дыхательных путей у людей [119]. Поскольку установка пищеводной питательной трубки во время операции является быстрой и простой процедурой, мы регулярно используем её в челюстно-лицевой хирургии. Крупные ретроспективные исследования на собаках и кошках показали, что большинство осложнений незначительны (смещение трубки, инфекция стомы) и легко поддаются лечению [128; 129]. Питательная трубка обеспечивает быстрое выздоровление и введение корма и лекарств животному, защищая при этом ротовую полость от любых механических воздействий. Хотя нет исследования, оценивающего послеоперационный исход с установкой питательной трубки или без неё, в согласии с другими авторами мы выступаем за этот подход [6; 88; 89].

Заключение

Челюстно-лицевая хирургия стала особой специализацией в ветеринарной хирургии, которая должна учитывать специфические анатомические и функциональные особенности такой сложной области. Лечение крупных дефектов, возникающих в результате онкологических резекционных процедур, требует отличных знаний анатомии головы и шеи, а также различных доступных вариантов реконструкции. Локорегионарные лоскуты осевого типа являются важным компонентом терапевтического арсенала в челюстно-лицевой хирургии, поскольку они позволяют немедленно восстановить дефекты при сохранении функции и достижении хороших косметических результатов, а это является ключевыми элементами для принятия владельцем решения о проведении резекционной операции. В последнее время особое внимание уделяется осевым локорегионарным лоскутам слизистой оболочки или кожи, основанным на ветвях лицевой артерии (артерии угла рта, верхней губной артерии). Эти лоскуты кажутся универсальными и надёжными и, благодаря их анатомической близости, лучше всего подходят для реконструкции челюстно-лицевых дефектов. Необходимы дополнительные ретроспективные исследования, чтобы в полной мере оценить весь потенциал этих методов. Большинство используемых реконструктивных методик направлено на закрытие дефекта и сосредоточено на реконструкции мягких тканей. Разработка надёжных и экономичных лоскутов, позволяющих проводить одноэтапную композитную реконструкцию, по-видимому, является следующим шагом в развитии челюстно-лицевой реконструктивной хирургии у мелких животных.

Вклад авторов

MG: поиск литературы, составление проекта и критический пересмотр интеллектуального содержания рукописи, идеи и создание схем и диаграммных изображений. DR: рецензия на статью. PH: идея написать рецензию на технику применения локорегионарного лоскута, предложение для публикации в Frontiers in Veterinary Science, поиск литературы, составление проекта, критическая проверка интеллектуального содержания, редактирование рукописи и подбор рисунков.

Конфликт интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось в отсутствие каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Литература

1. Gruntzig K, Graf R, Hassig M, Welle M, Meier D, Lott G, et al. Corrigendum to «The swiss canine cancer registry: a retrospective study on the occurrence of tumours in dogs in Switzerland from 1955 to 2008». J Comp Pathol. (2015) 153:64–5. doi: 10.1016/j.jcpa.2015.04.008.
2. Graf R, Gruntzig K, Boo G, Hassig M, Axhausen KW, Fabrikant S, et al. Swiss feline cancer registry 1965–2008: the influence of sex, breed and age on tumour types and tumour locations. J Comp Pathol. (2016) 154:195–210. doi: 10.1016/j.jcpa.2016.01.008.
3. Cray M, Selmic LE, Ruple A. Demographics of dogs and cats with oral tumors presenting to teaching hospitals: 1996–2017. J Vet Sci. (2019) 21: e70. doi: 10.4142/jvs.2020.21.e70.
4. Mikiewicz M, Pazdzior-Czapula K, Otrocka-Domagala I, Gesek M, Myrdek P. Oral cavity lesions in dogs: a retrospective study of 136 cases. J Comp Pathol. (2018) 158:122. doi: 10.1016/j.jcpa.2017.10.085.
5. Wingo K. Histopathologic diagnoses from biopsies of the oral cavity in 403 dogs and 73 cats. J Vet Dent. (2018) 35:7–17. doi: 10.1177/0898756418759760.
6. Tuohy JL, Selmic LE, Worley DR, Ehrhart NP, Withrow SJ. Outcome following curative-intent surgery for oral melanoma in dogs: 70 cases (1998–2011). J Am Vet Med Assoc. (2014) 245:1266–73. doi: 10.2460/javma.245.11.1266.
7. Farcas N, Arzi B, Verstraete F. Oral and maxillofacial osteosarcoma in dogs: a review. Vet Comp Oncol. (2014) 12:169–80. doi: 10.1111/j.1476–5829.2012.00352.x.
8. Piras L, Riccardo F, Iussich S, Maniscalco L, Gattino F, Martano M, et al. Prolongation of survival of dogs with oral malignant melanoma treated by en bloc surgical resection and adjuvant CSPG4-antigen electrovaccination. Vet Comp Oncol. (2017) 15:996–1013. doi: 10.1111/vco.12239.
9. Shah JP, Gil Z. Current concepts in management of oral cancer — surgery. Oral Oncol. (2009) 45:394–401. doi: 10.1016/j.oraloncology.2008.05.017.
10. Omura K. Current status of oral cancer treatment strategies: surgical treatments for oral squamous cell carcinoma. Int J Clin Oncol. (2014) 19:423–30. doi: 10.1007/s10147–014–0689-z.
11. Martano M, Iussich S, Morello E, Buracco P. Canine oral fibrosarcoma: changes in prognosis over the last 30 years? Vet J. (2018) 241:1–7. doi: 10.1016/j.tvjl.2018.09.005.
12. Riggs J, Adams VJ, Hermer JV, Dobson JM, Murphy S, Ladlow JF. Outcomes following surgical excision or surgical excision combined with adjunctive, hypofractionated radiotherapy in dogs with oral squamous cell carcinoma or fibrosarcoma. J Am Vet Med Assoc. (2018) 253:73–83. doi: 10.2460/javma.253.1.73.
13. Yoshikawa H, Ehrhart EJ, Charles JB, Custis JT, LaRue SM. Assessment of predictive molecular variables in feline oral squamous cell carcinoma treated with stereotactic radiation therapy. Vet Comp Oncol. (2016) 14:39–57. doi: 10.1111/vco.12050.
14. Randall E, Kraft S, Yoshikawa H, LaRue S. Evaluation of 18F-FDG PET/CT as a diagnostic imaging and staging tool for feline oral squamous cell carcinoma. Vet Comp Oncol. (2016) 14:28–38. doi: 10.1111/vco.12047.
15. Yoshikawa H, Maranon D, Battaglia C, Ehrhart E, Charles J, Bailey S, et al. Predicting clinical outcome in feline oral squamous cell carcinoma: tumour initiating cells, telomeres and telomerase. Vet Comp Oncol. (2016) 14:371–83. doi: 10.1111/vco.12117.
16. Sweet KA, Nolan MW, Yoshikawa H, Gieger TL. Stereotactic radiation therapy for canine multilobular osteochondrosarcoma: eight cases. Vet Comp Oncol. (2019) 18:76–83. doi: 10.1111/vco.12481.
17. Soukup JW, Snyder CJ, Simmons BT, Pinkerton ME, Chun R. Clinical, histologic, and computed tomographic features of oral papillary squamous cell carcinoma in dogs: 9 cases (2008–2011). J Vet Dent. (2013) 30:18–24. doi: 10.1177/089875641303000102.
18. Amory JT, Reetz JA, Sanchez MD, Bradley CW, Lewis JR, Reiter AM, et al. Computed tomographic characteristics of odontogenic neoplasms in dogs. Vet Radiol Ultrasound. (2014) 55:147–58. doi: 10.1111/vru.12101.
19. Skinner OT, Boston SE, Giglio RF, Whitley EM, Colee JC, Porter EG. Diagnostic accuracy of contrast-enhanced computed tomography for assessment of mandibular and medial retropharyngeal lymph node metastasis in dogs with oral and nasal cancer. Vet Comp Oncol. (2018) 16:562–70. doi: 10.1111/vco.12415.
20. Winer JN, Verstraete FJ, Cissell DD, Le C, Vapniarsky N, Good KL, et al. Clinical features and computed tomography findings are utilized to characterize retrobulbar disease in dogs. Front Vet Sci. (2018) 5:186. doi: 10.3389/fvets.2018.00186.
21. Winer JN, Verstraete FJM, Cissell DD, Lucero S, Athanasiou KA, Arzi B. The application of 3-dimensional printing for preoperative planning in oral and maxillofacial surgery in dogs and cats. Vet Surg. (2017) 46:942–51. doi: 10.1111/vsu.12683.
22. Hansen KS, Kent MS. Imaging in non-neurologic oncologic treatment planning of the head and neck. Front Vet Sci. (2019) 6:90. doi: 10.3389/fvets.2019. 00090.
23. Spriet M, Willcox JL, Culp WTN. Role of positron emission tomography in imaging of non-neurologic disorders of the head, neck, and teeth in veterinary medicine. Front Vet Sci. (2019) 6:180. doi: 10.3389/fvets.2019.00180.
24. Kafka UCM, Carstens A, Steenkamp G, Symington H. Diagnostic value of magnetic resonance imaging and computed tomography for oral masses in dogs. JSAfr Vet Assoc. (2004) 75:163–8. doi: 10.4102/jsava.v75i4.476.
25. Ghirelli CO, Villamizar LA, Pinto AC. Comparison of standard radiography and computed tomography in 21 dogs with maxillary masses. J Vet Dent. (2013) 30:72–6. doi: 10.1177/089875641303000201.
26. Soltero-Rivera MM, Krick EL, Reiter AM, Brown DC, Lewis JR. Prevalence of regional and distant metastasis in cats with advanced oral squamous cell carcinoma: 49 cases (2005–2011). J Feline Med Surg. (2014) 16:164–9. doi: 10.1177/1098612X13502975.
27. Thierry F, Longo M, Pecceu E, Zani DD, Schwarz T. Computed tomographic appearance of canine tonsillar neoplasia: 14 cases. Vet Radiol Ultrasound. (2018) 59:54–63. doi: 10.1111/vru.12561.
28. Stahle JA, Larson MM, Rossmeisl JH, Dervisis N, Neelis D. Diffusion weighted magnetic resonance imaging is a feasible method for characterizing regional lymph nodes in canine patients with head and neck disease. Vet Radiol Ultrasound. (2019) 60:176–83. doi: 10.1111/vru.12694.
29. Willcox JL, Spriet M, Zwingenberger AL, Phillips KL, Burton JH, Skorupski KA, et al. Evaluation of accuracy for 18 F-FDG positron emission tomography and computed tomography for detection of lymph node metastasis in canine oral malignant melanoma. Vet Comp Oncol. (2020). doi: 10.1111/vco.12651. [Epub ahead of print].
30. Silverman S, Kerr AR, Epstein JB. Oral and pharyngeal cancer control and early detection. J Cancer Educ. (2010) 25:279–81. doi: 10.1007/s13187–010–0045–6.
31. Seoane J, Alvarez-Novoa P, Gomez I, Takkouche B, Diz P, Warnakulasiruya S, et al. Early oral cancer diagnosis: the Aarhus statement perspective. a systematic review and meta-analysis. Head Neck. (2016) 38: E2182–9. doi: 10.1002/hed.24050.
32. Frazier S, Johns S, Ortega J, Zwingenberger A, Kent M, Hammond G, et al. Outcome in dogs with surgically resected oral fibrosarcoma (1997–2008)*. Vet Comp Oncol. (2012) 10:33–43. doi: 10.1111/j.1476–5829.2011.00272.x.
33. Gardner H, Fidel J, Haldorson G, Dernell W, Wheeler B. Canine oral fibrosarcomas: a retrospective analysis of 65 cases (1998–2010). Vet Comp Oncol. (2015) 13:40–7. doi: 10.1111/vco.12017.
34. Goldschmidt SL, Bell CM, Hetzel S, Soukup J. Clinical characterization of Canine Acanthomatous Ameloblastoma (CAA) in 263 dogs and the influence of postsurgical histopathological margin on local recurrence. J Vet Dent. (2017) 34:241–7. doi: 10.1177/0898756417734312.
35. Milovancev M, Russell DS. Surgical margins in the veterinary cancer patient. Vet Comp Oncol. (2017) 15:1136–57. doi: 10.1111/vco.12284.
36. Dores CB, Milovancev M, Russell DS. Comparison of histologic margin status in low-grade cutaneous and subcutaneous canine mast cell tumours examined by radial and tangential sections. Vet Comp Oncol. (2018) 16:125–30. doi: 10.1111/vco.12321.
37. Sarowitz BN, Davis GJ, Kim S. Outcome and prognostic factors following curative-intent surgery for oral tumours in dogs: 234 cases (2004 to 2014). J Small Anim Pract. (2017) 58:146–53. doi: 10.1111/jsap.12624.
38. Fulton AJ, Nemec A, Murphy BG, Kass PH, Verstraete FJM. Risk factors associated with survival in dogs with nontonsillar oral squamous cell carcinoma 31 cases (1990–2010). J Am Vet Med Assoc. (2013) 243:696–702. doi: 10.2460/javma.243.5.696.
39. Berg J. Principles of oncologic orofacial surgery. Clin Techniq Small Anim Pract. (1998) 13:38–41. doi: 10.1016/S1096–2867(98)80025-X.
40. Pope ER. Head and facial wounds in dogs and cats. Vet Clin N Am. (2006) 36:793–817. doi: 10.1016/j.cvsm.2006.03.001.
41. Degner D. Facial reconstructive surgery. Clin Techniq Small Anim Pract. (2007) 22:82–8. doi: 10.1053/j.ctsap.2007.03.009.
42. Buiks S, Haar G. Reconstructive techniques of the facial area head. In: ter Haar KJG, editor. Reconstructive Surgery Wound Management of the Dog Cats. London: Manson Pub. Ltd. (2013) p. 95–116.
43. Smith M. Axial-pattern flaps for maxillofacial reconstruction. In: Verstraete F, Lommer M, Arzi B, editors. Oral Maxillofacial Surgery in Dogs Cats. St Louis, MO: Elsevier. (2020) p. 538–45.
44. Bewley A, Arzi B. Microsurgical techniques in maxillofacial surgery. In: Verstraete F, Lommer M, Arzi B, editors. Oral Maxillofacial Surgery in Dogs Cats. St Louis, MO: Elsevier. p. 109–113. doi: 10.1016/B978–0–7020–7675–6.00020–6.
45. Disa JJ, Cordeiro PG. Mandible reconstruction with microvascular surgery. Semin Surg Oncol. (2000) 19:226–34. doi: 10.1002/1098–2388(200010/ 11)19:3<226:: AID-SSU4>3.0.C0;2-N.
46. Takushima A, Harii K, Asato H, Momosawa A, Okazaki M, Nakatsuka T. Choice of osseous and osteocutaneous flaps for mandibular reconstruction. IntJClin Oncol. (2005) 10:234–42. doi: 10.1007/s10147–005–0504-y.
47. Fernandes RP, Yetzer JG. Reconstruction of acquired oromandibular defects. Oral Maxil Surg Clin. (2013) 25:241–9. doi: 10.1016/j.coms.2013. 02.003.
48. Brown JS, Barry C, Ho M, Shaw R. A new classification for mandibular defects after oncological resection. Lancet Oncol. (2016) 17: e23–30. doi: 10.1016/S1470–2045(15)00310–1.
49. Comini LV, Spinelli G, Mannelli G. Algorithm for the treatment of oral and peri-oral defects through local flaps. J Cranio Maxill Surg. (2018) 46:2127–37. doi: 10.1016/j.jcms.2018.09.023.
50. Mannelli G, Arcuri F, Agostini T, Innocenti M, Raffaini M, Spinelli G. Classification of tongue cancer resection and treatment algorithm. J Surg Oncol. (2018) 117:1092–9. doi: 10.1002/jso.24991.
51. Butler DP, Dunne JA, Wood SH, Jallali N. A unifying algorithm in microvascular reconstruction of oral cavity defects using the trilaminar concept. Plastic Reconstr Surg — Global Open. (2019) 7: e2267. doi: 10.1097/G0X.0000000000002267.
52. Hayden RE, Nagel TH. The evolving role of free flaps and pedicled flaps in head and neck reconstruction. Curr Opin Otolaryngo. (2013) 21:305–10. doi: 10.1097/MOO.0b013e328362ceef.
53. Gabrysz-Forget F, Tabet P, Rahal A, Bissada E, Christopoulos A, Ayad T. Free versus pedicled flaps for reconstruction of head and neck cancer defects: a systematic review. J Otolaryngol Head Neck Surg. (2019) 48:13. doi: 10.1186/s40463–019–0334-y.
54. Degner DA, Walshaw R, Fowler JD, Lanz OI, Ocello P, Maier J, et al. Surgical approaches to recipient vessels of the head and neck for microvascular free tissue transfer in dogs. Vet Surg. (2004) 33:200–8. doi: 10.1111/j.1532–950X.2004.04030.x.
55. Kurach L, Plesman R, Grier-Lowe C, Linn K, Anthony J. Use of a hard palate mucoperiosteal flap for rostral muzzle reconstruction in a dog after a traumatic premaxillary degloving injury. Vet Surg. (2013) 42:192–7. doi: 10.1111/j.1532–950X.2012.01071.x.
56. Fowler DJ, Degner DA, Walshaw R, Walker D. Microvascular free tissue transfer: results in 57 consecutive cases. Vet Surg. (1998) 27:406–12. doi: 10.1111/j.1532–950X.1998.tb00147.x.
57. Liu C, Yeh L. A vascularized preputial free flap for labial reconstruction in a dog. Vet Surg. (2017) 46:1116–9. doi: 10.1111/vsu.12694.
58. Spiegel JH, Polat JK. Microvascular flap reconstruction by otolaryngologists: prevalence, postoperative care, and monitoring techniques. Laryngoscope. (2007) 117:485–90. doi: 10.1097/MLG.0b013e31802d6e66.
59. Arshad H, Ozer HG, Thatcher A, Old M, Ozer E, Agarwal A, et al. Intensive care unit versus non-intensive care unit postoperative management of head and neck free flaps: comparative effectiveness and cost comparisons. Head Neck. (2014) 36:536–9. doi: 10.1002/hed.23325.
60. Patel UA, Hartig GK, Hanasono MM, Lin DT, Richmon JD. locoregional flaps for oral cavity reconstruction: a review of modern options. Otolaryngol Head Neck Surg. (2017) 157:201–9. doi: 10.1177/0194599817700582.
61. Kaminski J, Waller BM, Diogo R, Hartstone-Rose A, Burrows AM. Evolution of facial muscle anatomy in dogs. Proc National Acad Sci USA. (2019) 116:14677–81. doi: 10.1073/pnas.1820653116.
62. Naldaiz-Gastesi N, Bahri OA, Munain AL de, McCullagh KJA, Izeta A. The panniculus carnosus muscle: an evolutionary enigma at the intersection of distinct research fields. J Anat. (2018) 233:275–88. doi: 10.1111/joa.12840.
63. Al-Bagdadi F. The integument. In: Evans H, Lahunta A, editors. Miller’s Anatomy of the Dog. St Louis, MO: Elsevier (2019) p. 61–77.
64. Pavletic M. Atlas of Small Animal Wound Management and Reconstructive Surgery. Ames, LA: Wiley-Blackwell. (2010).
65. Hugues H, Dransfield J. The blood supply to the skin of the dog. Br Vet J. (1959) 115:299–310. doi: 10.1016/S0007–1935(17)44652–5.
66. Bezuidenhout A. The heart arteries. In: Evans H, Lahunta A, editors. Miller’s Anatomy of the Dog. St Louis, MO: Elsevier (2019) p. 428–502.
67. Smith MM, Shults S, Waldron DR, Moon ML. Platysma myocutaneous flap for head and neck reconstruction in cats. Head Neck. (1993) 15:433–9. doi: 10.1002/hed.28801 50511.
68. Fahie MA, Smith BJ, Ballard JB, Moon ML, Smith MM. Regional peripheral vascular supply based on the superficial temporal artery in dogs and cats. Anatomia Histol Embryol. (1998) 27:205–8. doi: 10.1111/j.1439–0264.1998.tb00181.x.
69. Fahie MA, Smith MM. Axial pattern flap based on the cutaneous branch of the superficial temporal artery in dogs: an experimental study and case report. Vet Surg. (1999) 28:141–7. doi: 10.1053/jvet.1999.0141.
70. Hanai H. Stereological studies on several ducts and vessels by injection method of acrylic resin. 13. arterial distribution of the upper lip in some mammals. Okajimas Folia Anat Jpn. (1964) 40:81–128. doi: 10.2535/ofaj1936.40.1_81.
71. Irifune M. The facial artery of the dog. Okajimas Folia Anat Jpn. (1980) 57:55–78. doi: 10.2535/ofaj 1936.57.1_55.
72. Doyle CP, Degner DA. Evaluation of the superior labial musculomucosal flap in dogs: an angiographic study and case report. Vet Comp Orthop Traumatol (2019) 32:133–8. doi: 10.1055/s-0039–1677746.
73. Pavletic MM. Anatomy and circulation of the canine skin. Microsurgery. (1991) 12:103–12. doi: 10.1002/micr.1920120210.
74. Mitchell D. An Introduction to Oral and Maxillofacial Surgery. 2nd ed. Boca Raton, FL: CRC Press. (2015).
75. Patel SY, Meram AT, Kim DD. Soft tissue reconstruction for head and neck ablative defects. Oral Maxillofac Surg Clin North Am. (2019) 31:39–68. doi: 10.1016/j.coms.2018.08.004.
76. Starkman SJ, Williams CT, Sherris DA. Flap Basics i rotation and transposition flaps. Facial Plast Surg Cl. (2017) 25:313–21. doi: 10.1016/j.fsc.2017.03.004.
77. Bednarek R, Campos MS, Ramsey M. Transposition Flaps. Treasure Island, FL: StatPearls (2021).
78. Jones CA, Lipscomb VJ. Indications, complications, and outcomes associated with subdermal plexus skin flap procedures in dogs and cats: 92 cases (2000–2017). J Am Vet Med Assoc. (2019) 255:933–8. doi: 10.2460/javma.25 5.8.933.
79. Pavletic M. Canine axial pattern flaps, using the omocervical, thoracodorsal, and deep circumflex iliac direct cutaneous arteries. Am J Vet Res. (1981) 42:391–406.
80. Pavletic M. Axial pattern flaps in small animal practice. Vet Clin North Am Small Anim Pract. (1990) 20:105–25. doi: 10.1016/S0195–5616(90)50006–6.
81. Field EJ, Kelly G, Pleuvry D, Demetriou J, Baines SJ. Indications, outcome and complications with axial pattern skin flaps in dogs and cats: 73 cases. J Small Anim Pract. (2015) 56:698–706. doi: 10.1111/jsap.12400.
82. Peralta S, Nemec A, Fiani N, Verstraete F. Staged double- layer closure of palatal defects in 6 dogs. Vet Surg. (2015) 44:423–31. doi: 10.1111/j.1532–950X.2014.12131.x.
83. Zacher AM, Marretta S. Oral and maxillofacial surgery in dogs and cats. Vet ClinNAm. (2013) 43:609–49. doi: 10.1016/j.cvsm.2013.02.010.
84. Bozola AR, Gasques JA, Carriquiry CE, Oliveira MC de. The buccinator musculomucosal flap: anatomic study and clinical application. Plast Reconstr Surg. (1989) 84:250–7. doi: 10.1097/00006534–198908000–00010.
85. Pribaz J, Stephens W, Crespo L, Gifford G. A new intraoral flap: facial artery musculomucosal (FAMM) flap. Plast Reconstr Surg. (1992) 90:421–9. doi: 10.1097/00006534–199209000–00009.
86. Massarelli O, Vaira LA, Biglio A, Gobbi R, Piombino P, Riu GD. Rational and simplified nomenclature for buccinator myomucosal flaps. Oral Maxillofac Surg. (2017) 21:453–9. doi: 10.1007/s10006–017–0655–9.
87. Bryant KJ, Moore K, McAnulty JF. Angularis oris axial pattern buccal flap for reconstruction of recurrent fistulae of the palate. Vet Surg. (2003) 32:113–9. doi: 10.1053/jvet.2003.50018.
88. Tuohy JL, Worley DR, Wustefeld-Janssens BG, Mickelson MA, Ehrhart NP, Seguin B. Bilateral caudal maxillectomy for resection of tumors crossing palatal midline and use of the angularis oris axial pattern flap for primary closure or dehiscence repair in two dogs. Vet Surg. (2019) 48:1490–9. doi: 10.1111/vsu. 13252.
89. Dicks N, Boston S. The use of an angularis oris axial pattern flap in a dog after resection of a multilobular osteochondroma of the hard palate. Can Vet J. (2010) 51:1274–8.
90. Cook D, Thomson M. Complications of the angularis oris axial pattern buccal flap for reconstruction of palatine defects in two dogs. Aust Vet J. (2014) 92:156–60. doi: 10.1111/avj.12175.
91. Shetty V, Le AD. Oral soft tissue wound healing. In: Verstraete FJM, Lommer M, Arzi B, editors. Oral and Maxillofacial Surgery in Dogs and Cats. 2d ed. St Louis, MO: Elsevier (2020). p. 1–5. doi: 10.1016/B978–0–7020–4618–6.00001–4.
92. Shetty R, Lamba S, Gupta AK. Role of facial artery musculomucosal flap in large and recurrent palatal fistulae. Cleft Palate-craniofacial J. (2012) 50:730–3. doi: 10.1597/12–115.
93. Dupoirieux L, Plane L, Gard C, Penneau M. Anatomical basis and results of the facial artery musculomucosal flap for oral reconstruction. Br J Oral Maxillofac Surg. (1999) 37:25–8. doi: 10.1054/bjom.1998.0301.
94. Dundas JM, Fowler JD, Shmon CL, Clapson JB. Modification of the superficial cervical axial pattern skin flap for oral reconstruction. Vet Surg. (2005) 34:206–13. doi: 10.1111/j.1532–950x.2005.00032.x.
95. Pavletic M. Atlas of Small Animal Wound Management and Reconstructive Surgery. 4th ed. Ames, LA: Wiley-Blackwell (2018). doi: 10.1002/9781119267539.
96. Woodard CR. Complications in facial flap surgery. Facial Plast Surg Cl. (2013) 21:599–604. doi: 10.1016/j.fsc.2013.07.009.
97. Arzi B, Verstraete F, Lantz G. Maxillectomy techniques. In: Verstraete F, Lommer M, arzi B, editors. Oral Maxillofacial Surgery in Dogs Cats. St Louis, MO: Elsevier. 2d Ed. (2020) p. 499–514. doi: 10.1016/B978–0–7020–7675–6.00059–0.
98. Scott JE, Swanson EA, Cooley J, Wills RW, Pearce EC. Healing of canine skin incisions made with monopolar electrosurgery versus scalpel blade. Vet Surg. (2017) 46:520–9. doi: 10.1111/vsu.12650.
99. Rosenzweig LB, Abdelmalek M, Ho J, Hruza GJ. Equal cosmetic outcomes with 5–0 poliglecaprone-25 versus 6–0 polypropylene for superficial closures. DermatolSurg. (2010) 36:1126–9. doi: 10.1111/j.1524–4725.2010.01594.x.
100. Parell GJ, Becker GD. Comparison of absorbable with nonabsorbable sutures in closure of facial skin wounds. Arch Facial Plast S. (2003) 5:488–90. doi: 10.1001/archfaci.5.6.488.
101. Haar G ter, Buiks SC, Kirpensteijn J. Cosmetic reconstruction of a nasal plane and rostral nasal skin defect using a modified nasal rotation flap in a dog. Vet Surg. (2013) 42:176–9. doi: 10.1111/j.1532–950X.2012.01054.x.
102. Proot JLJ, Jeffery N, Culp WTN, Buracco P, Puerta B de la, Williams JM, et al. Is the caudal auricular axial pattern flap robust? A multi-centre cohort study of 16 dogs and 12 cats. (2005 to 2016). J Small Anim Pract. (2019) 60:102–106. doi: 10.1111/jsap.12946.
103. Smith M, Payne J, Moon M, Freeman L. Axial pattern flap based on the caudal auricular artery in dogs. Am J Vet Res. (1991) 52:922–5.
104. Magno SD, Giuseppe P, Pisani G, Morello E, Piras LA, Buracco P, et al. Caudal auricular axial pattern flap for the reconstruction of the upper eyelid in three cats. J Am Anim Hosp Assoc. (2020) 56:236–41. doi: 10.5326/JAAHA-MS-6987.
105. Stiles J, Townsend W, Willis M, Moore PA, Smith E. Use of a caudal auricular axial pattern flap in three cats and one dog following orbital exenteration. Vet Ophtalmol. (2003) 6:121–6. doi: 10.1046/j.1463–5224.2003.00275.x.
106. Trevor PB, Smith MM, Waldron DR, Hedlund CS. Clinical evaluation of axial pattern skin flaps in dogs and cats: 19 cases (1981–1990). J Am Vet Med Assoc. (1992) 201:608–12.
107. Spodnick GJ, Hudson LC, Clark GN, Pavletic MM. Use of a caudal auricular axial pattern flap in cats. J Am Vet Med Assoc. (1996) 208:1679–82.
108. Frasson MT, Freitag FAV, Huppes RR, Pazzini JM, Nardi AB de, Castro JLC, et al. Use of the angularis oris axial pattern buccal flap for the correction of facial defects in six dogs. Acta Sci Vet. (2020) 48:1–6. doi: 10.22456/1679–9216.100541.
109. Milgram J, Weiser M, Kelmer E, Benzioni H. Axial pattern flap based on a cutaneous branch of the facial artery in cats. Vet Surg. (2011) 40:347–51. doi: 10.1111/j.1532–950X.2011.00803.x.
110. Bradford M, Degner D, Bhandal J. Use of the angularis oris cutaneous flap for repair of a rostral mandibular skin defect in a cat. Vet Comp Orthopaed Traumatol. (2011) 24:303–6. doi: 10.3415/VCOT-10–09–0129.
111. Yates G, Landon B, Edwards G. Investigation and clinical application of a novel axial pattern flap for nasal and facial reconstruction in the dog. Aust VetJ. (2007) 85:113–8. doi: 10.1111/j.1751–0813.2007.00111.x.
112. Losinski SL, Stanley BJ, Schallberger SP, Nelson LL, Towle Millard HA. Versatility of the angularis oris axial pattern flap for facial reconstruction. Vet Surg. (2015) 44:930–8. doi: 10.1111/vsu. 12408.
113. Nakahara N, Mitchell K, Straw R, Kung M. Hard palate defect repair by using haired angularis oris axial pattern flaps in dogs. Vet Surg. (2020) 49:1195–202. doi: 10.1111/vsu.13435.
114. Tomlinson J, Presnell K. Use of the temporalis muscle flap in the dog. Vet Surg. (1981) 10:77–9. doi: 10.1111/j.1532–950X.1981.tb00634.x.
115. Cavanaugh RP, Farese JP, Bacon NJ, Lurie DM, Milner RJ. Oronasal fistula repair utilizing a temporalis muscle flap in a dog with severe trismus. J Am Anim Hosp Assoc. (2011) 47:447–54. doi: 10.5326/JAAHA-MS-5699.
116. Cheung L-K. An animal model for maxillary reconstruction using a temporalis muscle flap. J Oral Maxillofac Surg. (1996) 54:1439–45. doi: 10.1016/S0278–2391(96)90261-X.
117. Squaquara R, Evans KFK, Spilimbergo SS di, Mardini S. Intraoral reconstruction using local and regional flaps. Semin Plast Surg. (2010) 24:198–211. doi: 10.1055/s-0030–1255337.
118. Brennan T, Tham TM, Costantino P. The temporalis muscle flap for palate reconstruction: case series and review of the literature. Int Arch Otorhinolaryngol (2017) 21:259–64. doi: 10.1055/s-0037–1598653.
119. Kinzinger MR, Bewley AF. Perioperative care of head and neck free flap patients. Curr Opin Otolaryngo. (2017) 25:405–10. doi: 10.1097/MOO.0000000000000384.
120. Dort JC, Farwell DG, Findlay M, Huber GF, Kerr P, Shea-Budgell MA, et al. Optimal perioperative care in major head and neck cancer surgery with free flap reconstruction: a consensus review and recommendations from the enhanced recovery after surgery society. JAMA Otolaryngol Head Neck Surg. (2016) 143:292. doi: 10.1001/jamaoto.2016.2981.
121. Mitchell RM, Mendez E, Schmitt NC, Bhrany AD, Futran ND. Antibiotic prophylaxis in patients undergoing head and neck free flap reconstruction. JAMA Otolaryngol Head Neck Surg. (2015) 141:1096. doi: 10.1001/jamaoto.2015.0513.
122. Poorten VV, Uyttebroek S, Robbins KT, Rodrigo JP, Bree R de, Laenen A, et al. Perioperative antibiotics in clean-contaminated head and neck surgery: a systematic review and meta-analysis. Adv Ther. (2020) 37:1360–80. doi: 10.1007/s12325–020–01269–2.
123. Balamohan SM, Sawhney R, Lang DM, Cherabuddi K, Varadarajan VV, Bernard SH, et al. Prophylactic antibiotics in head and neck free flap surgery: a novel protocol put to the test. Am J Otolaryng. (2019) 40:102276. doi: 10.1016/j.amjoto.2019.102276.
124. Madgar O, Segal O, Mansour J, Sagiv D, Dubriyan A, Bedrin L, et al. Closed- suction compared with Penrose drainage after free flap reconstruction in the head and neck. Br J Oral Maxillofac Surg. (2019) 57:1098–101.
125. Amir I, Morar P, Belloso A. Postoperative drainage in head and neck surgery. Ann Royal Coll Surg Engl. (2010) 92:651–4.
126. Flam JO, Smith RV. What is the optimal time for removing drains in uncomplicated head and neck surgery? Laryngoscope. (2018) 128:545–6.
127. Keane E, Fitzgerald CW, Smyth DA, Nataraj MB, Lang E, Skinner LJ, et al. Drain usage in head and neck surgery: a national survey of thirty-five surgeons across ten units. IrMedJ. (2010) 111:839.
128. Breheny CR, Boag A, Gal AL, Hoim S, Cantatore M, Anderson D, et al. Esophageal feeding tube placement and the associated complications in 248 cats. J Vet Intern Med. (2019) 33:1306–14.
129. Nathanson O, McGonigle K, Michel K, Stefanovski D, Clarke D. Esophagostomy tube complications in dogs and cats: retrospective review of 225 cases. J Vet Intern Med. (2019) 33:2014–9.

СВМ № 2/2024

Источник: Copyright © 2021 Guzu, Rossetti and Hennet. Front. Vet. Sci. 8:685036. This is an open-access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution License (CC BY). The use, distribution or reproduction in other forums is permitted, provided the original author(s) and the copyright owner(s) are credited and that the original publication in this journal is cited, in accordance with accepted academic practice. No use, distribution or reproduction is permitted which does not comply with these terms.

Вам также могут быть интересны статьи:

Использование синтетического заменителя костной ткани при хирургическом лечении опухоли зуба у собаки

Приобретённые дефекты средней линии нёба у кошек: хирургическое лечение и его исходы

Реконструкция обширного раневого дефекта черепно-лицевой области лицевым аксиальным лоскутом у собаки

Регенеративный подход к билатеральной ростральной реконструкции нижней челюсти в серии клинических случаев у собак

Реверсивный лоскут на артерии Сафена у 13 собак